Главная » Статьи по ветеренарии » Диссертация

ОРЕНБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ

с На правах рукописи

МАЗАЕВ АЛЕКСАНДР ВЛАДИМИРОВИЧ

Показатели реактивности коров и телят
на фоне применения споробактерина

16.00.02 – патология, онкология и морфология животных

Диссертация на соискание ученой степени

кандидата биологических наук

Научные руководители:

заслуженный ветеринарный врач РФ,

доктор ветеринарных наук, профессор

Жданов Петр Иванович

заслуженный ветеринарный врач РФ,

доктор ветеринарных наук, профессор

Жуков Алексей Петрович

ОРЕНБУРГ - 2004

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. В настоящее время в сельском хозяйстве Россий-ской Федерации одной из ведущих отраслей является молочное животноводст-во, которому уделяется большое внимание. Успешное развитие данной отрасли напрямую зависит от воспроизводительной функции коров и максимальной со-хранности новорожденных телят.

В последние годы ученые отмечают широкое распространение акушер-ско-гинекологических патологий у коров, желудочно-кишечных и респиратор-ных болезней среди телят (Войтенко Л.Г., 2000; Казеев Г.В. и соавт., 2002; Суб-ботин В.В. и соавт. 2002, 2004 и др.). Вместе с тем для профилактики и лечения данных патологий предложено большое количество лекарственных средств, но многие из них слишком дороги, а потому малодоступны и в практических усло-виях не применяются (Гончаров В.П. и соавт., 1991). Длительное применение других антибактериальных средств, а в частности антибиотиков, приводит к появлению и широкому распространению резистентных штаммов микроорга-низмов, к нарушению микробных экологических систем в пищеварительном тракте и возникновению дисбактериозов (Варганов А.И. и соавт., 1996; Иванов-ский А.А. и соавт., 1996). В связи с этим в мире резко возрос интерес к симбионтным микроорганизмам и пробиотическим препаратам на их основе (Глушков В.В. и соавт., 1999; Мозжерин В.И. и соавт., 2000; Мигунова Л.А., 2003 и др.).

Среди большого числа пробиотиков, применяемых в медицинской и ветеринарной практике, большое внимание уделяется пробиотикам из живых культур бактерий рода Bacillus. К таковым можно отнести споробактерин, изготавливаемый на основе Bac. subtilis 534 (Никитенко В.И., 1986, 1990, 1991; Никитенко И.К. и соавт., 1994; Жданов П.И., 1996).

Цели и задачи исследований. Основной целью наших исследований яви-

лось изучение возможности применения споробактерина жидкого для профи-лактики послеродовых патологий у коров и массовых заболеваний новорож-денных телят.

Для выполнения намеченной цели нами были поставлены следующие задачи:

1. Установить распространение послеродовых патологий у коров и мас-совых заболеваний новорожденных телят.
2. Изучить влияние споробактерина жидкого на организм глубокостель-ных корови телят, полученных от них.
3. Изучить влияние споробактерина жидкого на течение послеродового периода, показатели воспроизводительной функции.
4. Выяснить влияние споробактерина жидкого на организм телят с рождения до 3-х месяцев жизни.
5. Разработать профилактические дозы и режимы применения споробак-терина жидкого для профилактики послеродовых патологий у коров и массовых заболеваний новорожденных телят.
6. Определить экономическую эффективность применения споробакте-рина жидкого.

Научная новизна работы заключается в успешном применении нового пробиотика споробактерина жидкого в ветеринарной практике для профилак-тики послеродовых патологий у коров, массовых заболеваний новорожденных телят и повышения прироста живой массы.

При этом впервые:

• определены оптимальные дозы и схемы применения препарата для глубокостельных коров и телят в зависимости от их возраста и физиологического состояния.
• изучено влияние споробактерина жидкого на некоторые морфологические, биохимические показатели крови, факторы неспецифической защиты организма коров и телят полученных от них.
• показана положительная роль споробактерина для профилактики послеродовых патологий у коров и массовых заболеваний новорожденных телят.

Практическая значимость. Результаты проведенных исследований свидетельствуют о безвредности и высокой эффективности применения споро-бактерина. Так, его введение глубокостельным коровам способствует сниже-нию послеродовых патологий и более быстрому восстановлению воспроизво-дительной функции, получению более крупноплодного и жизнеспособного по-томства. Применение споробактерина новорожденным телятам способствует уменьшению отхода молодняка от желудочно-кишечных и респираторных болезней различной этиологии в 3,3 раза и повышению прироста массы в 1,4-2,8 раза без дополнительных затрат на корма и содержание.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены, обсуждены и одобрены на: итоговых научно-практических конференциях факультета ветеринарной медицины Оренбургского государственного аграр-ного университета (2001, 2002); Международной научной конференции “Актуальные вопросы морфологии и хирургии XXI века ” (Оренбург, 2001); Международной научно-практической конференции “Актуальные проблемы ветеринарной медицины” (Ульяновск, 2003); Международной научно-практической конференции “Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биологии” (Оренбург, 2003).

Публикации. Основные научные результаты по теме диссертации опубликованы в четырех печатных работах.

Положения, выносимые на защиту:

• назначение споробактерина глубокостельным коровам способствуетповышению их естественной резистентности, благоприятно влияет на течение послеродового периода и улучшает воспроизводительную функцию после отела;
• скармливание телятам споробактерина значительно снижает их заболеваемость и существенно увеличивает прирост массы тела.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Общая характеристика, классификация и назначение пробиотиков

Пробиотики – биологические препараты из разных видов живых микро-организмов. Термин “пробиотики” был предложен Ричардом Паркером в 1974 г. для обозначения микроорганизмов и продуктов их ферментации, обладающих антагонистической активностью по отношению к патогенной микрофлоре. Но впервые об этом явлении рассказал миру русский биолог И.И.Мечников, который обобщил разрозненные экспериментальные данные в области изучения явления антагонизма. Учение И.И. Мечникова о преждевременной старости человека в связи с постоянной интоксикацией организма продуктами жизне-деятельности гнилостных бактерий кишечника получило не только широкое признание, но и практическое применение. В 1981г. Т.Riise предложил под названием пробиотик понимать “увеличение полезных микроорганизмов в пищеварительном тракте животного-хозяина путем введения больших количеств желательных бактерий для переустановления и поддержания идеальной ситуации в кишечнике“, а в 1989 г. R.Fuler “живую микробную кормовую добавку, которая оказывает полезное действие на животное-хозяина путем улучшения его кишечного микробного баланса”. Последнее определение было принято в научной литературе.

M.Kozas (1989) предложил разделить пробиотики на четыре группы:

1. аэробы – спорообразующие бактерии рода Bacillus;
2. анаэробы – спорообразующие бактерии рода Сlostridium;
3. бактерии, продуцирующие молочную кислоту (Bifidobacterium, Lactobacillus, Enterococcus, неспорообразующие);
4. дрожжи – используются в качестве сырья при изготовлении пробиотиков.

По мнению ряда авторов (Антипов В.А., 1981; Тараканов Б.В., 1987; Петрухин И.В., 1989; Антипов В.А., 1991; Сафонов Г.А. и соавт., 1992; Тараканов Б.В., Николичева Т.А., 2000; Малик Н.И., Панин А.Н.., 2001) пробиотики можно разделить на несколько групп:

• класические монокомпонентные пробиотики – бифидиум, лакто-, коли-бактерин и др.
• самоэлиминирующие антагонисты – бактисубтил, биоспорин, споро-бактерин, энтерол, бактиспорин и др.
• поликомпонентные пробиотики – бифилонг, аципол, линекс и др.
• комбинированные – бифидумбактерин форте, кипацид, комплексный иммуноглобулиновый препарат (КИП), бифилиз.
• рекомбинантные или генно-инженерные пробиотики – субалин.
• антибиотикоустойчивые пробиотики – бифидумбактерин и лактобакте-рин, которые можно применять вместе с антибиотиками.

Имеющиеся литературные данные свидетельствуют о многогранном воздействии пробиотиков из разного рода бактерий на организм животных. Так, в результате многочисленных исследований отечественных и зарубежных авторов, был обобщен и представлен в виде схемы механизм действия пробиотиков из бактерий рода Bacillus (см. рис 1). (Резник С.Р. и соавт., 1989, 1991; Смирнов В.В. и соавт., 1990, 1993; Спивак М.Я. и соавт., 1983; Пшеничников В.А. и соавт., 1988; Войчишина Л.Т., 1991; Никитенко В.И., 1991; Печеркина С.А. и соавт., 1992; Пирузян Л.Ф. и соавт., 1992; Чернякова В.И. и соавт., 1993; Жданов П.И., 1996; M.Fox, 1980; L.Izadkhah et al., 1980; F.Tihole, 1982; J.Benedettini et al., 1983; V.Shan et al., 1984; M.D.Chuhrienko et al., 1992; E.M.Dityatkovskaya et al., 1992 и др.).

Авторами установлено, что начальным звеном в действии пробиотиков из бактерий рода Bacillus является время их перорального введения в организм. В желудочно-кишечном тракте бактерии прорастают и переходят в вегетативные

1.Схема механизма лечебно-профилактического действия биопрепаратов из бактерий рода Bacillus (по В.В.Смирнову и др., 1993)формы. Периоды прорастания спор и размножения вегетативных клеток сопровождается продуцированием биологически активных веществ: ферментов (протеаз, амилаз, липаз и др.); антибиотиков (микобациллин, субтилин, бацилизин, субспорин и др.); аминокислот (лизин, гистидин, аргинин и др.); лизоцима; антитоксических веществ. Благодаря этому бактерии рода Bacillus повышают неспецифическую резистентность организма, кроме того, они действуют в кишечнике как биокатализатор.

В.А.Антипов (1991) при изучении механизма действия пробиотиков на организм животных выделил ряд основных моментов:

1. Микроорганизмы, составляющие основу пробиотиков, участвуют в белковом питании организма вследствие размножения, отмирания и переваривания их в желудочно-кишечном тракте.
2. Обеспечение организма хозяина пластическим материалом (амино-кислоты, органические кислоты, липиды, углеводы и др.) осуществля-ется за счет ферментативной активности (амилолитической, протеолитической и др.) симбионтной микрофлоры.
3. Антибактериальная активность симбионтов, перекиси водорода, мо-лочной, уксусной, пропионовой и других органических кислот, созда-вая при этом, кислую среду, обладающую бактерицидным действием в отношении условно-патогенных и патогенных микроорганизмов. Важная роль в механизме антибактериальной активности, как указы-вает автор, отводится образованию лизоцима и антибиотиков широкого спектра действия.
4. Неспецифическая защита кишечника от патогенных бактерий осуще-ствляется созданием антагонистического барьера, известного под об-щим названием колонизационная резистентность кишечника. Микро-организмы пробиотиков покрывают поверхность слизистой оболочки кишечника толстым слоем и тем самым механически предохраняют ееот внедрения патогеных микроорганизмов.

В.И.Никитенко и соавт. (1994) на основании многочисленных исследова-ний открыли неизвестный защитный механизм макроорганизма от инфекции с помощью бактерий определенных видов, в частности наиболее активных в биологическом отношении Bac. subtilis. Как указывает автор, этот вид бактерий из желудочно-кишечного тракта с током крови и лимфы способен проникать в очаги повреждения различной локализации, где оказывает лечебное действие за счет образования антибиотиков, протеолитических ферментов и др.

Мнение В.И.Никитенко по указанному выше факту совпадает с исследо-ваниями F.Tihole (1982), В.В.Смирнова и соавт. (1988, 1992, 1993), Б.А.Бердичесвского и соавт. (1993) и др.

Б.В.Тараканов и соавт. (2000) в механизме действия пробиотиков из бак-терий рода Lactobacillus ведущую роль отводят образованию антибактериальных веществ, конкуренции за питательные вещества и места адгезии, изменению микробного метаболизма (увеличение или уменьшение ферментативной активности), а также, стимуляции иммунной системы.

Имеются сообщения о противоопухолевой активности лактобацилл. По-лученные данные свидетельствовали, что они оказывали ингибирующее дейст-вие на опухолевые клетки; подавляли бактерии, которые продуцируют глюку-ронидазу, азоредуктазу и нитроредуктазу, конвертирующие в пищеварительном тракте проканцерогены в канцерогены; разрушали канцерогены типа нитроза-минов и подавляли активность нитроредуктазы, которая вовлекается в их синтез (Bogdanov I.G., Dalev P.G., Gurevich A.I., 1975).

В ряде исследований показано, что кишечная микрофлора может изме-нять уровень холестерина в сыворотке крови. У без микробных животных, со-держащихся на обогащенных холестерином рационах, аккумулируется прибли-зительно в 2 раза больше холестерина в крови, чем у животных с обычной мик-рофлорой. Последние экскретируют холестерина в фекалиях больше, чем безмикробные животные, и это дает основание полагать, что кишечная микрофлора препятствует его всасыванию из кишечника (Gilliland S.E., 1990).

Важной особенностью большинства пробиотиков, как указывают многие отечественные и зарубежные авторы, является их полная безвредность при вве-дении в организм разными путями. При длительном применении животным они не обладают аллергизирующим, канцерогенным и другими отрицательными эффектами. Не оказывают вредного влияния на развитие плодов и потомство (Федорова О.О., 1990; Смирнов В.В. и соавт., 1992; Thach Pham Ngoс et al., 1968; Guida V. and Guida P., 1978; Fox M., 1980 и др.).

В настоящее время в нашей стране и за рубежом в медицине и ветеринар-ной практике широко применяются пробиотики, зарегистрированные в установленном порядке (табл.1).

1.Ветеринарные пробиотические препараты, зарегистрированныев Российской Федерации.

Наименование препарата	Разработчик
АБК	ВГНКИ
Апиник © ®	ВГНКИ-НПО “ЦМЭИ”
Бифидумбактерин ветеринарный © ®	ВГНКИ
Лаком	ВГНКИ
Лактицид	ВГНКИ
Саратовская-3	ВГНКИ
Реалак ©®	ВГНКИ-НПО “ЦМЭИ”
Стрептобифид ©®	ВГНКИ
Интестевит ©®	ВГНКИ
Фагосан ©®	ВГНКИ
Биосан	Кировский СХИ
Бифацидобактерин (лактобифадол)	МГЦПБ-ООО “М-ТЕХ”
Бифидумбактерин	АО “Партнер”, Москва
Бифинорм	Брянский СХИ
Ветом- 1.1	НПЦ “Вектор”, Новосибирск
Галлиферм	НПО “Биотехнология”
Лактоамиловорин	ВНИИФБиП с.-х. животных
Бактонеотим	ООО “Веда”, Пущино
Иммунобак	ООО “Веда”, Пущино
Лактоферон	ООО “Веда”, Пущино
Ромакол	ВНИИ экспериментальной ветеринарии
Савит	НПО “Агробиоцентр”
Споровит	ЗАО “Имунопреперат”, Уфа
Стрептоэколат	ВНИИВСГЭ
Субалин	НПЦ “Вектор”, Новосибирск
Фитобактрин	НПК“Биофармтокс”, Санкт-Петербург
Целлобактерин	ВНИИ с.-х. микробиологии, Санкт-Петербург
Продигест	Словения
Эодик-пак-уэй	США
Калби-мильх	Германия
Биоплюс с	Германия
Омнифлора	Франция

В животноводстве нашей страны широко применяют препараты симби-онтных микроорганизмов: ацидофильную бульонную культуру (АБК), пропио-ново-ацидофильную бульонную культутру (ПАБК), лактобактерин, бифидум-бактерин, ацидофилин, бифилакт, пропиовит, пропиацид, азотацид, колибакте-рин, СБА, СТФ-1/56, бифацидобактерин и др, которые положительно зареко-мендовали себя при профилактике и лечении диарей, колибактериозов и других заболеваний кишечного тракта сельскохозяйственных животных (Антипов В.А., Субботин В.М., 1980; Блинова Л.Н., 1984; Платонов А.В., 1985; Карпов В.М., 1987; Соколова Н.А. и соавт., 1991; Шубин А.А. и соавт., 1994; Субботин В.В. и соавт., 1998).

В последнее время в медицинской и ветеринарной практике все большее распространение получают биопрепараты, созданные на основе бактерий рода Bacillus: бактисубтил, биоспорин, споробактерин, бактерин-SL, БПС-44, эндобактерин, ветосубалин, бактиспорин, ветом – 1.1, РАС и др. (Горшевикова Э.В. и соавт., 1992; Литвин В.П. и соавт., 1986; Никитенко В.И., 1984, 1991; Жданов П.И. и соавт., 1990, 1993; Смирнов В.В. и соавт., 1989; Chuhrienko M.D.et al., 1992; Dityatkovskaya E.M. et al., 1992; Подберезный В.В., 1993; Новоскольцева Т.М. и соавт., 1998; Мозжерин В.И. и соавт., 2000; Иноземцев В.П. и соавт., 1998; Жирков И.Н. и соавт., 1999).

Споробактерин новый пробиотик из штамма Bac.subtilis 534, предложен-ный В.И.Никитенко (1991). Пероральное применение споробактерина в дозе по 5 млрд. микробных клеток 1-4 раза в течение 10 суток, при одновременном ис-ключении из терапии антибиотиков и других антибактериальных средств, игра-ет важную роль в профилактике хирургических инфекций и оказывает высокую лечебную эффективность у больных людей при открытых и закрытых перело-мах конечностей, гнойных ранах мягких тканей, остеомиелитах, пневмониях, менингитах, хрониосепсисе, тонзиллитах, гайморитах, диатезах, дисбактерио-зах, бактериальных инфекциях и др. (Никитенко В.И. и соавт., 1989; Никитенко В.И., 1990; Никитенко В.И. и др., 1991; Никитенко В.И и соавт., 1994). Также в настоящее время споробактерин широко применяется в ветеринарии (Жданов П.И. и соавт., 1990; Жданов П.И. и соавт., 1993; Жданов П.И., 1994).

Сотрудниками ВНИИФБиП с.-х. животных разработаны и предложены для внедрения в производство следующие пробиотики: лактоамиловорин, цел-лобактерин, стрептофагин и др.

Применение лактоамиловорина при выращивании поросят, телят, цып-лят-бройлеров стабильно обеспечивает ингибирование в кишечнике эшерихий, сальмонелл и гемолитических бактерий; стимулирование микроорганизмов, гидролизующих сложные полисахариды; увеличение потребления концентри-рованных кормов; повышение ферментативной активности в тонком кишечни-ке; стимуляцию неспецифической резистентности животных; профилактиче-ское и лечебное действие при желудочно-кишечных болезнях, протекающих с клинической картиной диареи; увеличение сохранности животных и прироста массы тела; выраженное антихолестеринемическое действие (Тараканов Б.В. исоавт., 1999, 2000).

Целлобактерин способствует более быстрому формированию и становле-нию микрофлоры в преджелудках телят раннего возраста, что позволяет сни-зить расход цельного молока при их выращивании. Он эффективен для молод-няка со сформировавшимся рубцовым типом пищеварения при стойловом со-держании животных на сбалансированных рационах с высоким уровнем грубых кормов и низким содержанием концентратов (Тараканов Б.В. и соавт., 2002).

Стрептофагин – новый биологический, высокоспецифический, нетоксич-ный, безвредный и экологически чистый препарат, содержащий бактериофаги, лизирующие чувствительные к ним штаммы амилолитических стрептококков рубца жвачных. Он предназначен для скармливания высокопродуктивным лак-тирующим коровам, содержащимся на высококонцентратных рационах (более 40% по питательности), в качестве средства регуляции метаболических процес-сов в рубце (Тараканов Б.В. и соавт., 2000).

В сотрудничестве с различными научными коллективами сотрудниками ВГНКИ разработаны и внедрены пробиотические многовидовые препараты: лактицид (1992, для свиноводства), лаком (1995, для птицеводства), интестевит (1996, для всех видов животных), фагосан (1996, преимущественно для домаш-них животных).

За рубежом в животноводстве и ветеринарии применяют пробиотики еугалан (Австралия), колифлорал, эугален (Австрия), нормофлор (Болгария), лактомикс (Венгрия), омнифлора (Германия), лактози (Италия), омнифлора, лиобифидус, бифидаген, бактисубтиль (Франция), севакол, лакто, галакто (Чехословакия, Швейцария), лактиферм, пигфекс (Швеция) и др. В США и Японии используют пробиотические препараты, основой которых являются микроорганизмы родов Lactobacillus, Streptococcus и Bacillus (Adler M.E., Da Massa A.J., 1980; Isshiki Y. et al., 1980; Jnooka S., Kimura M., 1983; Mass B.R. et al., 1983; Jnooka S. et al., 1986; Fox S.M., 1988 и др.).

Лактиферм разработанный фирмой "Медифарм" (Швеция), он представ-ляет собой культуру фекального стрептококка М-74. Его используют при лече-нии и профилактике гастроэнтеритов и колиэнтеротоксемий, а также корриги-рования антимикробной терапии и стимуляции роста (Raduloviе J.et al.,1976).

На основе мутантного штамма ацидофильных бактерий, устойчивого к ряду антимикробных препаратов, в Швеции разработан также препарат пиг-фекс, наиболее эффективен для свиней и овец. Хороший профилактический эффект при болезнях пищеварительной системы был получен при применении бактериального препарата на основе ацидофильной палочки (Недялков С., 1967), при этом сокращаются случаи диареи и снижается тяжесть течения болезни.

Во Франции для борьбы с дисбактериозами предложен препарат, в кото-рый входят антибиотикоустойчивые штаммы молочнокислых бактерий, ацидо-фильной и болгарской палочек и молочнокислого стрептококка. Кроме того, в стране используют препараты лиобифидус и бифидаген, в Австралии - еугалан, в Германии - омнифлора, представляющие собой смесь чистых лиофилизиро-ванных культур бифидобактерий, ацидофильной и кишечной палочек (Сamаrer W., 1961).

В Венгрии для борьбы с дизентерией применяют бактериальный препарат лактомикс: ежедневная дача внутрь, с первого по восьмой день жизни, позволяет снизить заболеваемость молодняка с 12,1 до 2,4% (Meszaros I., 1978).

В Болгарии при даче смеси ацидофильной палочки с пропионовокислыми бактериями телятам и ягнятам для нормализации микрофлоры кишечника и стимуляции роста получены положительные результаты. На этом основании авторы рекомендуют заменить применение антибиотиков пробиотиками, поскольку они не влияют отрицательно на другую симбионтную микрофлору (Vladimirov I., 1981).

Пробиотики используют для стимуляции неспецифического иммунитета,профилактики и лечения смешанных желудочно-кишечных инфекций, рас-стройств пищеварения алиментарной этиологии (дисбактериозы и др.), возни-кающие вследствие резкого изменения состава рациона, нарушений режимов кормления, технологических стрессов и других причин; изменения микрофло-ры пищеварительного тракта после лечения антибиотиками и другими антибак-териальными химиотерапевтическими средствами; замены антибиотиков в комбикормах для молодняка животных, пушных зверей и птицы; улучшения процессов пищеварения, ускорения адаптации животных к высокоэнергетиче-ским рационам и небелковым азотистым веществам, повышения эффективно-сти использования корма и продуктивности животных (Смирнов В.В., Резник С.Р., Василевская И.А., 1982; Платонов А.В., 1985; Тараканов Б.В., 1987; Тимошко М.А., 1990).

Применение пробиотиков для профилактики и лечения при желудочно-кишечных расстройствах у молодняка позволяло сократить заболеваемость, па-деж и повысить прирост массы тела у поросят после отъема (Малик Н.И., Панин А.Н., 2001).

При включении пробиотиков в комплексные схемы лечения собак при га-стрите, диспепсии, парвовирусном и коронавирусном энтерите, кишечной фор-ме чумы плотоядных, а также при различных отравлениях они зарекомендовали себя как средство, восстанавливающее перистальтику и кишечный биоценоз.

Пробиотики способствуют нормализации биохимических показателей сыворотки крови животных, восстановлению кальций-фосфорного отношения, снижению активности щелочной фосфатазы. У ослабленных животных пробио-тики снижали риск развития рецидивов и повышали сохранность (Малик Н.И. и соавт., 2001).

У поросят и птицы под влиянием пробиотиков быстро восстанавливается кишечный биоценоз, нарушенный вследствие применения антибиотиков. В остром опыте на птице установлено повышение колонизационной резистентности кишечника к инфицированию сальмонеллами (Малик Н.И. и соавт., 2001).

В лабораторных опытах на биологических моделях и в производственных испытаниях на животных разных половозрастных групп установлено, что по-мимо общего регуляторного воздействия на кишечный биоценоз пробиотики оказывали заметное стимулирующее действие на иммунологический статус. У животных, получавших препараты, увеличивалось количество Т-лимфоцитов, активизировалась функция В-лимфоцитов, повышалась фагоцитарная актив-ность нейтрофилов (Панин А.Н. и соавт., 1996).

Пробиотики оказывают регенерирующее действие на различные структу-ры слизистой кишечника. Было изучено их влияние на морфофункциональные характеристики тонкого отдела кишечника новорожденных поросят при гастро-энтерите. Патогистоморфологические исследования показали, что после их применения в двенадцатиперстной кишке восстанавливались бокаловидные клетки, отвечающие за выработку слизи и бактерицидного фермента лизоцима, а в тощей кишке – морфология и функция слизистой оболочки, кровоснабже-ние, ферментативная и секреторная активность, в подвздошной кишке – мор-фология ворсинок и крипт. Таким образом, под действием пробиотических препаратов нормализовалась структура слизистой не только в конкретном отделе кишечника, но и на всем его протяжении (Barrow P.A., Brooker B.E., Fuller R., 1980).

Применение пробиотиков ослабленным животным предупреждало разви-тие феномена транслокации условно-патогенных микроорганизмов из желу-дочно-кишечного тракта в органы и ткани. Согласно результатам бактериоло-гических исследований у животных, получавших пробиотический препарат, снижалась частота выделения из внутренних органов патогенных эшерихий, стафилококков и сальмонелл. Эти данные свидетельствуют о том, что пробио-тики не только нормализуют кишечный биоценоз и профилактируют желудоч-но-кишечные болезни молодняка, но также влияют на многие системы, связанные с повышением колонизационной резистентности кишечника (Nemkova R., Laukova F., 1997; Панин А.Н. и соавт., 1999).

1.2. Неспецифическая резистентность как защитная функция организма

Под устойчивостью принято понимать способность организма проти­востоять неблагоприятным воздействиям факторов внешней среды. Состоя­ние её определяют неспецифические защитные факторы организма живот­ных, орга-нически связанные с их видовыми, индивидуальными и конститу­ционными особенностями (Жучаев К.В., 1992; Макеева Т.В., Маренков В.Г., 1992; Тюрев В.Г., Харитонов В.В., 1993).

Резистентность как физиологическая функция состояния органов и сис­тем обусловлена деятельностью гормональной и вегетативной нервной сис­тем, регулируемых центральной нервной системой (Пол У. и др., 1987).

Знание особенностей формирования естественной резистентности при действии различных факторов окружающей среды и разработка методов и приемов повышения ее в последнее время, в связи с особенностями совре­менного животноводства, приобретает особое значение (Калашник И.А., Юрченко Л.И., 1992; Сапего В.И., 1993; Урбанович П.П. и соавт., 1993; Шарандак В.И., 1993; Пурецкий В.И. 1993; Мешков В.М. и соавт., 1997).

Исследованиями А.А. Барышева (1992) установлено, что степень защиты снижается пропорционально укрупнению хозяйств, кон­центрации в них живот-ных, а также внедрению мер по повышению продук­тивности. Однако гораздо проще и экономичнее не допускать действия чрезвычайных раздражителей, приводящих к нарушению адаптационных способностей организма и возникно-вению заболеваний, чем лечить живот­ных.

Широкое распространение получили респираторные заболевания, сальмо-неллезы, пастереллезы. Это связано с тем, что в условиях неудовлетворительного микроклимата, скученного содержания животных, жизне­способность и вирулентность микрофлоры резко возрастают, а в некоторых случаях отдельные виды условной, слабовирулентной факультативно-патогенной микрофлоры приобретают явно выраженную патогенность (Eckert M., 1990; Шубин А.А. и др., 1994;).

Поэтому среди зоогигиенических мероприятий особое значение при­обретают меры воздействия, повышающие естественную резистентность и устойчивость животных к заболеваниям (Горлов И.Ф.,1987).

Внешняя среда для организма является неспецифическим, различным по качеству и интенсивности, раздражителем. Всякую нагрузку, вызывае­мую действием внешних факторов и приводящую к проявлению той или иной степени реактивности организма, Г. Селье (1982) назвал стрессом, а состояние, в котором оказывается организм под воздействием стрессоров, может быть стрессовым, или общим адаптационным синдромом.

В развитии функционального напряжения организма основная роль отводится состоянию и сдвигам в активности гипофиза и надпочечников, продуцирующих адаптивные гормоны при стрессовой реакции. Глюкокортикоиды, участвуя в неспецифической реакции организма, оказывают интенсивное действие на клеточные и гуморальные механизмы иммунобиологической реактивности и выполняют роль регулятора.

Однако такое влияние глюкокортикоидов проявляется лишь при нормальном состоянии системы гипоталамус- гипофиз - кора надпочечников. Ослабление же функции этой системы или чрезмерное её повышение отрицательно сказывается на резистентности организма (Stein M. et al, 1985).

Сила и длительность стадии резистентности характеризуют адаптационную энергию организма, которая у каждого животного имеет индивиду­альные особенности (Ferguson J.J.,1972).

Высокая адренокортикальная реактивность сочетается с лучшими показателями клеточной защиты организма, с большей активностью и интенсивностью фагоцитарного процесса, с более быстрым ходом всех этапов фагоцитарной реакции (Плященко С.И., 1991).

Теоретические и лабораторные разработки в настоящее время нашли прочное подтверждение в животноводстве. Так, установлено, что организм животных на недостаточное кормление отвечает так же, как и на голод, по­вышением функции надпочечников. Избыток белка в рационе не только вызывает реакцию тревоги, но одновременно уменьшает усвоение ретинола. При недостатке и отсутствии витамина А происходит снижение продукции кортикостероидов, следовательно, и ослабление защитных сил организма (Лебенгарц Я. 3., 1994).

Исследование физиолого-экологических аспектов адаптации позволяет получить общее представление об особенностях взаимодействия организмов с многообразными био- и абиотическими факторами внешней среды, вскрыть механизмы поддержания гомеостаза на всех уровнях физиологической инте- грации: начиная от субклеточного и кончая сложными формами поведения, протекающими на популяционном уровне. Разработка этих вопросов в трудах известных ученых (Сорока С.И., 1984; Матюхин В.А. и др., 1986; Миррахимов М.М. и др.,1985) позволила решить ряд про­блем биологического и социально-гигиенического характера, определить ста­дии развития адаптационного процесса, выявить "эффекты перенапряжения" при кумуляции и суммации экологических факторов, установить механизмы снижения адаптационных возможностей под влиянием изменений внешней среды, разработать прогноз сдвигов в характеристике здоровья популяции (Бабак И.М., 1991; Костомахин Н.М. и др.,1991; Барышев А.А., 1992).

Таким образом, приспособительная изменчивость и приспособительные реакции как биологическая проблема в немалой степени относятся и к области патологии, которая проявляется , когда механизмов поддержания гомеостазаоказывается недостаточно для полного уравновешивания имеющихся сдвигов, и они не могут обеспечить адекватную адаптационную реакцию орга­низма. Вследствие этого важным как в теоретическом, так и в прикладном отношении является положение о так называемой цене адаптации. При истинной (физиологической) адаптации изменения физиоло­гических функций не выходят за пределы нормы реакции, а при дизадаптации (патологической форме адаптации) они проявляются в различных отклонениях (Бабак И.М, 1991; Костомахин Н.М.и др., 1991; Барышев А.А., 1992).

Следует иметь в виду, что стрессоры действуют на организм животных не только на гуморальном уровне, но и через раздражение ретикулярной форма­ции среднего мозга, а также и рефлекторным путем. Нервная система участвует в функциональных отправлениях организма как интегрирующая и регулирую­щая не параллельно с эндокринной, а субординационно, и здесь ей принадле­жит решающая роль. Следовательно, мы имеем дело с широким диапазоном влияния окружающей среды и многосторонней реакцией на неё организма жи­вотных. В теории об общем адаптационном синдроме на передний план выдви­гается значение гипофизарно-адренокортикальной системы, в результате чего все реакции, возникающие в организме в ответ на воздействие факторов внеш­ней среды, по существу рассматриваются сквозь призму гуморальной системы регуляции. Не отрицая в механизме общей адаптации роли гуморально-эндокринных факторов, необходимо подчеркнуть, что всякий приспособитель-ный процесс не сопровождается автономными изменениями отдельных физио­логических параметров и функций, а представляет собой взаимно обусловлен-ную интеграцию различных функциональных систем (Карпуть И. М., 1993).

Признание сложности и многогранности процесса адаптации позволяет выделить ряд компонентов, обеспечивающих приспособление организма к окружающей среде. К ним относятся регуляторные, пластические, энергетичес-кие и неспецифические компоненты адаптации. В регуляторных процессахведущая роль, согласно павловским принципам, принадлежит высшей нервной деятельности. Не исключается значение гуморальной системы регуля­ции, ей только придается не самостоятельное и не главенствующее положение, характерное для воззрений многих зарубежных авторов, а подчиненное значе­ние (Костомахин Н.М. и др., 1991).

В мобилизации энергетических ресурсов организма важное значение придается симпатоадреналовой системе (Панин Л.Е.,1978), а в основе реализации неспецифических компонен­тов адаптации лежит активация защитных систем (Миррахимов М.М. и др.,1985). Установлено, что неспецифические адап­тивные реакции отражают наиболее общие закономерности адаптации и могут служить критерием её эффективности. Эффект неспецифических адаптацион­ных изменений нередко отождествляется с механизмом общей адаптации, по­скольку принцип мобилизации защитных приспособлений служит основным условием сохранения нормального уровня жизненно важных констант (Анохин С.А.,1992).

Однако реакция адаптации, возникающая при воздействии различных стрессоров, связана с отклонением от состояния равновесия, с нарушением ста­бильности организма. И если действие стрессоров слишком сильно или про­должительно, в процессе адаптации возникают заболевания. Г.Селье (1982) называет их болезнями адаптации, другие авторы - болезнями недостаточности. Эти болезни осложняют развитие животноводства по интенсивной техноло­гии поэтому необходимо проведение дополнительных мероприятий по защите животных от неблагоприятного воздействия внешней среды (Бабак И.М., 1991; Костомахин Н.М. и соавт., 1991).

Изучение механизмов защиты организма при воздействии стрессоров может иметь большое научное и практическое значение, т.к. позволит путем создания соответствующих условий воздействовать на ответные реакции орга­низма и направлять их в нужное русло, т.е. соответствующим образом трениро­вать организм животного, повышать его устойчивость. (Monjan A.A., Collector M.J., 1977; Буяров B.C., 1994).

Установление отрицательно действующих на здоровье животных факто­ров окружающей среды, выявление наиболее опасных стрессоров, ослабляю­щих естественную резистентность и иммунобиологическую реактивность орга­низма и обусловливающих заболевания, разработка на этой основе соответст­вующих мероприятий - все это является одной из важнейших задач современ­ной ветеринарно-гигиенической науки.

1.3. Функциональные системы резистентности

Резистентность относится к числу важнейших интегральных функцио-нальных характеристик организма и является показателем его устойчивости к различным воздействиям. Она базируется на механизмах, которые сформиро-вались в процессе эволюции, закреплены естественным отбором и обусловли-вают адаптивную норму реакции того или иного индивида или вида в целом. В своих наблюдениях И.И. Мечников (1903) связывал резистентность (невоспри-имчивость) не только с иммунобиологическими явлениями, но и с устойчиво-стью, которая обеспечивается другими приспособительными механизмами.

Принципиально пути исследования регуляции защитных функций сво­дятся к поиску центральных аппаратов контроля в мозгу, определению аффе­рентных механизмов притока, информации в ЦНС и анализу эффекторных ка­налов, через которые управляющие сигналы поступают к исполнительным ор­ганам, их функциональным элементам и клеткам (Корнева Е.А., Шеконян В.А. 1982).

Исходя из системных представлений о механизмах резистентности ос­новным эффекторным звеном неспецифической защиты организма являются системы микро- и макрофагов, комплемента, интерферона, лизоцима, антимик­робной устойчивости кожи и слизистых, а специфической - Т и В - субсистемиммунитета.

Основной механизм сводится к активации мембранных оксидаз, которые катализируют перенос электронов с восстановленной формы никотинамидаде-ниндинуклеотидфосфата H2 (НАДФ Н2) на молекулярный кислород, запуская гексозомонофосфатный шунт (ГМФШ). По законам внутриклеточного гомео-стаза ГМФШ вырабатывает новую порцию НАДФ Н2, замыкая положитель­ную обратную связь. Не исключено, что кроме НАДФ Н2 - оксидаз в респираторном взрыве нейтрофилов участвуют НАДФ H2 - оксидазы, которые не свя­заны с ГМФШ. Можно предполагать, что ведущим механизмом в нарушении функции поглощения нейтрофильных гранулоцитов является депрессия НАДФ Н2- оксидазной системы полинуклеаров (Klebanoff S.J., 1975).

Специфическая рецепция фагоцитоза не исключает иных форм контакта полинуклеаров крови с объектом поглощения. В опсонических реакциях спо­собны участвовать различные компоненты плазмы, не связанные с иммуногло-булинами и комплементом. В их числе псевдо-, α - и β- эуглобулины, С - реак­тивный белок (Janzot P.O. et al.,1969), фракции α -1 - α -2-глобулинов (Palisa V., 1977). Есть мнение, что α -2-глобулины и С- реактивный белок, сорбируясь на поверхности объектов фагоцитоза, повышают их гидрофобность, улучшая условия физического контакта с плазматической мембраной фагоцита (Van Oss C.J. et al, 1974; Маянский А.Н., Маянский Д.Н., 1983). В отличие от них кис­лый α -1-гликопротеин блокирует способность ПМЯЛ к фагоцитозу, вследствие чего хроническая недостаточность α-2-опсонинов рас­сматривается некоторыми авторами как потенциально болезненное состояние (Saba T.M., 1975).

Предварительно вызванная недостаточность лизосом (Брауде А.И., 1967), аномалии гранулярных фракций (Breton - Jorius J., 1976), а также нарушение функции их мембран и ферментов ( Segal A.W., 1978) приводят к торможению фагоцитарного процесса и препятствуют его завершенности. В частности, из­вестный синдром Чедиака-Хигаси характеризуется наличием в нейтрофильных лейкоцитах гигантских гранул, снижением бактерицидных процессов, активно­сти ферментов, задержкой их выброса в фагосому и как следствие повышен­ной чувствительностью к инфекции (Blume R.S., 1969; Vassalli J.-D.et al, 1978).

Эффективность механизмов фагоцитоза существенно зависит от полно­ценности реализации начальных стадий процесса: приближения лейкоцитов кфагоцитируемому объекту и аттракции частиц к поверхности фагоцитов. Из­вестно, что способность лейкоцитов мигрировать в сторону объекта фагоцитоза зависит как от хемотаксических свойств самого объекта, так и от хемотаксичес-ких факторов плазмы крови, к которым относятся компоненты СЗа и С5а комплемента и высокомолекулярный комплекс С5 в 67 ( Lachmann P.J., 1975; Henson P., 1977; Riisgaard S. et al, 1977). He исключено, что единственно реаль­ным эффектором комплемент зависимого хемотаксиса полинуклеаров in vivo является комплемент С5а (Teinner A.J., Cooper N.R., 1982).

В роли факторов сыворотки, определяющих функции лейкоцитов, в том числе их хемотаксическую и миграционную способности, могут быть лимфоци-тарные хемотаксические факторы, некоторые полипептиды и иммунные ком­плексы (Boxer L.A. et al, 1978;Chenoweth D.E., Hugli Т.Е., 1978; Sher R.et al, 1978). Например, выработка опсонинов при активации lg-антителами сочетает­ся с образованием комплемента С5а - одного из самых сильных эндогенных стимуляторов нейтрофилов. Хемотаксические стимулы обусловливают направ­ленное движение фагоцитов к объекту поглощения (Ramsey W.S., 1972; Keller H.U. et al, 1975). При этом происходит передвижение гиалоплазмы с образова­нием псевдоподии в направлении вещества-инициатора.

Сложность механизмов, обеспечивающих хемотаксис, делает его одной из самых уязвимых форм реактивности полинуклеаров. Дефекты клеток неред­ко усиливаются за счет нарушений в гуморальных системах. Недостаточностьхемотаксической функции полинуклеаров связана с появлением во внеклеточной среде факторов, иммо- билизующих нейтрофилы, а снижение эффективности аттракции может быть обусловлено нарушением электростатического взаимодействия между частицами фагоцитируемого объекта с поверхностью фагоцита и действием различных компонентов плазмы крови (Nagura Н. et al., 1977; Пигаревский В.Е., 1976;Marsot P. et al., 1978).

Важными компонентами неспецифической защиты организма, способст-вовавшими реализации иммунологических реакций, являются системы компле­мента, интерферона, лизоцима. Функциональная система комплемента участву­ет в ряде ключевых гомеостатических реакций, в том числе и в цитолизе микробных и опухолевых клеток, медиации воспаления, стимуляции фагоцитоза, вирус нейтрализирующем действии, индукции иммунного ответа (Резникова Л.С., 1967; Ченчикова Э.П., 1976; Пол У. и др., 1988).

Бактерицидные свойства лизоцима связывают со способностью гидроли-зовать (β-1,4- гликозидные связи пептидогликанов бактериальной стенки мик­роорганизмов (Леонтович В.А., 1976). Его активность зависит от присутствия Н2С>2 и аскорбиновой кислоты (Thomas W.R. et al., 1978), что указывает на взаимосвязь нарушений бактерицидных свойств лизоцима с изменениями обме-на веществ.

Антимикробная устойчивость кожи и слизистых обеспечивается, биоце­нозом микрофлоры и бактерицидными свойствами тканей. Нормальная микро­флора состоит как из постоянной (характерной для данного вида организма), так и из случайной, временной микрофлоры. Взаимосвязь макроорганизма и его микрофлоры так велика, что часто трудно определить, что является пер­вичным - изменения, наступающие в макроорганизме, или в его микрофлоре. По данным В.Г. Петровской и О.П. Марко (1976), изменение микрофлоры в по­давляющем большинстве случаев вторично, т.е. это следствие снижения мест­ной и общей резистентности организма. Наблюдаемое в последние годы нарас­тание удельного веса заболеваний, вызываемых условно-патогенными микро­организмами, являющимися представителями нормальной микрофлоры, связа­но с нарушениями сложившегося в эволюции баланса между организмом и его микрофлорой, с одной стороны, и нарушениями равновесия внутри микробных ассоциаций - с другой.

Вместе с тем отсутствие нормальной микрофлоры вызывает ослабление как клеточных, так и гуморальных факторов защиты, в основе которого лежат два механизма: первичный, вызванный отсутствием антигенного раздражения и других прямых воздействий, обусловливающих торможение созревания лимфоидной ткани, угнетение переваривающей функции макрофагов и снижение уровня γ-глобулиновой фракции сыворотки, и вторич­ный, опосредованный через повышение функции коры надпочечников, которое в свою очередь ведет к дополнительному подавлению лимфоидной ткани, по­нижению содержания гликопротеидов и лизоцима в крови, замедленной дифференцировке макрофагов. Однако, несмотря на дефекты в защитных механиз­мах организма, лишенного нормальной микрофлоры, отмечена лишь некоторая задержка во времени иммунологического ответа.

Представленные данные показывают, что в процессе взаимоотношений макроорганизма с микроорганизмами последние способны как угнетать, так и стимулировать его защитные функции. При этом иммуностимулирующая роль микрофлоры относится, видимо, к основной (Петровская В.Г., Марко О.П., 1976). Таким образом, микроорганизмы являются естественным компонентом резистентности, постоянно поддерживающим ее в функционально активном и целостном состоянии. Антигенное присутствие необходимо на всех этапах и уровнях формирования иммунного ответа. Приобретенный к инфекционным агентам иммунитет - от начала и до конца антигензависимое явление, форми­рующееся на основе экологического равновесия системы "макроорганизм-нормальная микрофлора" (Обгольц А.А., 1980). Высокая чувствительность нормальной микрофлоры к различным факторам внешней и внутренней среды позволяет путем характеристики видового и количественного состава нормальной микрофлоры, бактерицидных свойств кожи и слизистых адекватно отразить состояние противоинфекционной устойчивости организма.

Основным звеном специфических форм защиты являются лимфоциты, осуществляющие связь и взаимодействие всех органов иммунной системы (тимуса, костного мозга, лимфатических узлов, миндалин, селезенки, крови). Одна часть лимфоцитов, имеющих костномозговое происхождение, под влиянием тимуса приобретает способность участвовать в реакциях клеточного им­мунитета (Davies E.J. et al., 1983). Другая часть костномозговых лимфоцитов (тимуснезависимые) участвует в реакциях гуморального иммунитета. Рядом авторов (Parrott D.M. et al., 1966; Roitt J.M. et all., 1969; Raff M.C., 1971) было сформулировано положение о тимусзависимых и бурсазависимых (зависящих от сумки Фабрициуса у птиц и красного костного мозга - аналога этого органа у млекопитающих) лимфоцитах, которые выполняют различные функции в про­цессах реализации клеточного и гуморального иммунного ответа. Выработка тимусзависимых (Т-лимфоцитов) и бурсазависимых (В-лимфоцитов) клеток является физиологическим процессом, который протекает при отсутствии анти­генной стимуляции, но зависит от поступления стволовых клеток из костного мозга (Арипов У.А. и др., 1976). Т- и В-системы лимфоцитов играют важней­шую роль в поддержании гомеостаза организма, обеспечении стабильности его антигенных структур, реализации иммунного ответа (Taussig M. еt al, 1980; Корнева Е.А., Шекоян В.А., 1982).

Помимо рассмотренных показателей к механизмам, обеспечивающим ре-зистентность организма, довольно часто относят еще пропердин, бета-лизины, нормальные антитела, циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК). Эти пока­затели занимают в известной мере особое положение. Пропердин входит как составная часть в систему комплемента. Бета-лизины являются гормоноподобными мембраноактивными полипептидами. Нормальные антитела представляют собой комлементарные иммуноглобулиновые структуры, характеризующие состояние В-системы лимфоцитов.

В заключение следует подчеркнуть важность системного подхода к ана­лизу защитных функций при оценке состояния резистентности. Актуальность этого вопроса связана с многообразием проявлений защитных реакций, разли­чием целей их изучения, отсутствием единой методологии, методическими трудностями в натурных исследованиях.

1.4. Акушерско-гинекологические заболевания: распространенность, классификация и профилактика

Увеличение производства мяса, молока и другой продукции мясомолоч-ного животноводства в значительной мере зависит от правильной организации воспроизводства стада и интенсивного использования биологических возмож-ностей коров. Однако успешную реализацию этих факторов затрудняют аку-шерско-гинекологические заболевания, которые вызывают бесплодие, сниже-ние продуктивности, преждевременную выбраковку животных. В работе вете-ринарных специалистов все большее значение придается профилактике и лече-нию акушерско-гинекологических заболеваний животных. По данным В.П. Гончарова, В.А. Карпова (1985), в промышленных молочных комплексах, на специальных животноводческих фермах колхозов ежедневно ветеринарные специалисты затрачивают от 25 до 50% своего времени на работу, связанную с воспроизводством стада и оказанием лечебно-профилактической помощи животным с акушерско-гинекологической патологией.

Наиболее четкое определение бесплодия дано А.П. Студенцовым с соавт. (1986): "Бесплодие – нарушение воспроизводства потомства, вызванное ненор-мальными условиями существования самок и самцов в виде погрешностей вкормлении, содержании и эксплуатации, неправильного осеменения, болезней полового аппарата". Автор называет бесплодную самку, не осемененную или осемененную, но не оплодотворившуюся в течение одного месяца после родов, а молодую самку – в течение одного месяца после достижения зрелости тела.

Причина бесплодия, как правило, является прошедшим фактором, обыч-но, первопричина уже не действует, а ее следствие, в виде морфологических изменений (перерождение органов и тканей) и функциональных нарушений проявляется в конкретной форме бесплодия через более или менее значитель-ный отрезок времени (Студенцов А.П. с соавт., 1986).

Анализируя имеющиеся литературные данные отечественных (Шеренас А.И., 1986; Варкалис К., 1988; Ибрагимов Э.К., 1991; Буданцев А.И., 1994; Не-жданов А.Г. и соавт., 1994; Полянцев Н.И., 1994; Турченко А.Н. и соавт., 1994, 1996; Чамаев А.М., 1996; Кленов В.А. и соавт., 1997; Лимаренко А.А., 1998; Турченко А.Н., 1998; Срудин В.А. и соавт., 1998; Войтенко Л.Г., 1999; Казеев Г.В. и соавт.,2002) и зарубежных (Boitor L. et al., 1985; Kucharski J. et al., 1985; Mocanu I., 1985; Runceanu L. et al., 1985; Steffan J., 1987; Vandeplassche M., 1987; Bolinder A. et al., 1988; Lee L.A. et al., 1989; Zdunczyk S. et al., 1989) авто-ров можно сделать вывод о том, что из гинекологических болезней коров и те-лок чаще встречаются эндометриты – 28-90 %; вагиниты - до 26 %; инволюция матки – 20-33 %; задержание последа – 5-23 %; киста яичника – 5-14 %; вульви-ты – 12 % и реже плацентиты – до 8 %; цервититы – до 6 %; оофориты – до 2 %; сальпингиты – 1,5 %.

По данным Э.Л. Горева (1981) гинекологическим заболеваниям предше-ствуют осложнения родовых и послеродовых процессов, которые зависят от физиологического состояния организма в предродовом, главным образом – су-хостойном периоде. Определяющую роль в распределении послеродовых осложнений и гинекологических заболеваний играет патология родов и в боль-шей мере срок и характер отделения последа, которые оказывают влияние напоследующий процесс восстановления воспроизводительной функции.

При различных расстройствах функции и воспалительных процессах, возникающих в половых органах коров и телок, широко используются средства современной терапии, основанной на принципах физиологичности, активности, комплексности и экономической эффективности (Гончаров В.П., Карпов В.А., 1991). Принцип физиологичности лечения обеспечивается, прежде всего, путем создания оптимального режима кормления и содержания, использования средств, регулирующих нервно - трофическую функцию и нормализующих обмен веществ (Кленов В.А., Сивожелезова Н.А., Пономарев В.К., 1997). Принцип активной терапии реализуется путем радикального устранения этиологических факторов, применения наиболее эффективных средств и методов лечения до полного выздоровления (Кленов В.А., Сивожелезова Н.А., Пономарев В.К., 1997).

Комплексность терапии достигается использованием хорошо продуманной обоснованной схемы лечения с применением методов и средств этиотропной, патогенетической, заместительной, стимулирующей и других видов терапии. Успех лечения зависит от правильно поставленного диагноза, глубокого понимания патогенетической сущности болезни, механизмов терапии (Миролюбов М.Г., Бареков А.А., 1984).

Чтобы лучше понять взаимосвязь и значение методов терапии и тем самым облегчить их правильный выбор при лечении больных, необходима классификация этих методов, основанная на действии их на этиологические и патогенетические факторы, знание которых позволяет понять характер и особенности болезненных процессов и, следовательно, осуществлять рациональную терапию (Миролюбов М.Г., 1994).

С учетом всего вышесказанного следует обратить внимание и на профи-лактические мероприятия, которые направлены на предупреждение акушерско-гинекологических патологий. Профилактические мероприятия в борьбе с бесплодием должны быть направлены или базироваться на учете выявляемых в ходе акушерско-гинекологических диспансеризаций скота причин нарушения воспроизводства (Таран В.В., Чушкин А.Э., 1989).

В хозяйствах при лечении акушерско-гинекологических патологий редко учитываются вышеуказанные мероприятия, и лечение направлено на быстрое подавление инфекции препаратами, включающими антибиотики, сульфанил-амиды, нитрофурановые соединения в различных комбинациях.

Длительное использование химиотерапевтических средств, завышение доз, нарушение кратности введения привело к появлению лекарственно устой-чивых микроорганизмов, при чем необоснованная химиотерапия превращается в звено этиопатогенеза хронических инфекций (Ивановский А.А., 1996).

Исследованиями А.И. Варганова и соавт. (1996) установлено снижение эффективности антимикробных препаратов, кроме того, по их данным, антибиотики и сульфаниламиды, применявшиеся при лечении коров поступают в молоко, в результате чего оно в течение нескольких дней не может быть использовано в пищу человека и для приготовления молочнокислых продуктов.

Другими авторами установлен большой процент устойчивых штаммов к антибиотикам, а в частности к пенициллину, тетрациклину, мономицину, полимиксину, левомицетину, эритромицину (Беспалов В.Л. и соавт., 1983; Sobiraj et al., 1987; Моцкялюнас Р.И., 1989; Takacs et al., 1988; 1989; Казеев Р.В. и соавт., 1989).

При использовании с лечебной и профилактической целью указанных препаратов следует учитывать вероятность их резорбции маточной стенкой, попадание в кровеносное русло с последующей экскрецией через молочную железу.

Как указывает Д.Д.Логвинов (1971) при потреблении молока, содержаще-го антибиотики и сульфаниламидные препараты, в организме людей и живот-ных происходит селекция резистентных популяций патогенных микроорганизмов.

В США и Англии около 5-10 % населения высокочувствительны к пенициллину. Остаточные количества таких препаратов влияют на обмен веществ, вызывают патологические изменения в печени, а при длительном поступлении приводят к ослаблению образования иммунитета и снижению резистентности. Кроме того, при технологических процессах на молочных предприятиях нали-чие в молоке остаточных веществ приводит к получению продуктов, непригод-ных к употреблению (Putro P.P., 1988; Williams B.L. et al., 1988; Dawson L.I., 1988; Golbs S. et al., 1989). Также эту проблему рассматривали отечественные авторы (Гавриш В.Г. и соавт., 1996; Нежданов А.Г. и соавт., 1996). Таким обра-зом, по возможности необходимо свести к минимуму применение химиотера-певтических препаратов для лечения коров, особенно в период лактации.

Все вышесказанное указывает на то, что ветеринарная практика испыты-вает острую необходимость в препаратах, имеющих спектр антимикробного действия, дающих возможность получать экологически чистые продукты пита-ния и вместе с тем повышающих неспецифическую резистентность и иммуно-реактивность организма животных.

В последние годы для лечения и профилактики акушерско-ги-некологических болезней широко используются пробиотики, содержащие в своем составе микроорганизмы, которые обладают ярко выраженным антаго-низмом по отношению к патогенным и условно-патогенным микробам – биосан (Опекунов К.А. с соавт., 1994; Шубин А.А. с соавт., 1988; Варганов А.И., 1994; Гавриш В.Г., 1997), процель (Анюлис Э. с соавт., 1989), эндобактерин (Полян-цев Н.И., 1993), бализ (Гавриш В.Г., 1995), бактоцеллолактин (Ивановский А.А., 1996), бифидумбактерин (Гавриш В.Г., 1997), лактобрил (Ковальчук А.А., Ходаков А.В., 1994; Слипченко С.Н., 1994; Глушков В.В., Теш А.И., 1999), спо-робактерин (Кленов В.А. с соавт., 1991; Жданов П.И., 1996; Войтенко Л.Г. с со-авт., 2000), спорметрин (Кузин А.И.с соавт., 2002), лактобифадол (Мигунова

Л.А., 2003) протеолитические ферменты – иммозим (Шелюгина З.Г. с соавт., 1989; Арестов И.Г. с соавт., 1989; Знайдаускас Б. с соавт., 1989), трипсин (Радо-славов В. с соавт., 1991), лизосубтилин (Арестов И.Г. с соавт., 1989; Рубанец Л.Н., 1998), которые способны гидролизировать белки нежизнеспособных тка-ней и гнойных масс, не повреждая при этом живые клетки, а также способны лизировать пептидогликан клеточных стенок микробов.

1.5. Распространенность массовых желудочно-кишечных болезней сельскохозяйственных животных

Заболевания молодняка сельскохозяйственных животных продолжают оставаться одной из серьезнейших причин, сдерживающих развитие животноводства и наносящих ему значительный ущерб (Субботин В.В., Сидоров М.А., 2001).

Как указывают М.А.Исмаилов и соавт. (1997), желудочно-кишечные заболевания телят имеют практически повсеместное распространение как на мелких, так и на крупных животноводческих фермах нашей страны, причем гибель молодняка может доходить в отдельных хозяйствах до 30-40%.

По данным В.П.Иноземцева и соавт. (1998), в Российской Федерации незаразные болезни органов пищеварения у телят молочного периода составляют 39,7-90 % притом, что около трети заболевших животных гибнут в первые дни жизни вследствие острых гастроэнтеритов с явлением диареи.

В.И.Мозжерин и соавт. (2000), проводя исследования на молодняке крупного рогатого скота, сделали вывод о том, что в хозяйствах Башкортостана ежегодно заболевают 70-80 % новорожденных телят, причем значительная часть из них погибает, а переболевший молодняк отстает в росте и развитии, и впоследствии остается низкопродуктивным.

В.В.Субботин и соавт.(2002, 2004) в своих исследованиях отмечали, чтооколо 80 % телят погибает в первые две недели жизни, а общие потери по причине желудочно-кишечных болезней с симптомокомплексом диареи составляют около 50 %. Выздоровевшие телята в дальнейшем на 30-50 % отстают в росте и развитии.

Г.М.Топурия (2003) проводя, анализ заболеваемости и падежа телят в хозайствах Оренбургской области отмечал, что в некоторых районах почти 100 % новорожденных телят переболевают желудочно-кишечными болезнями с диарейным синдромом. Падеж при этом составлял 42,3 - 60,3 % к полученному приплоду.

По мнению некоторых авторов среди болезней новорожденных телят наиболее часто встречаются расстройства деятельности пищеварительной системы, причем ведущее место принадлежит диспептическим расстройствам и на долю диспепсии приходится 80-95 % с летальностью от 15 до 70 % (Митюшин В.В., 1989; Жирков И.Н. и соавт., 1999; Мищенко В.А. и соавт., 1999, Кондрахин И.П., 2003).

Паршин П.А. и соавт. (2004), проводя диагностику желудочно-кишечных патологий у телят сделали вывод о том, что на крупных фермах часто встречается гастроэнтерит с охватом до 100 % поголовья.

В.Г.Зароза (1985), U. Johannsen et al. (1980) и др. предложили разделить желудочно-кишечные болезни молодняка на 4 группы:

1. инфекции с поражением кишечника – энтеротоксический коли-бактериоз, рота- и коронавирусный энтерит, криптоспоридиоз;
2. инфекции с энтеральным и парентеральным поражением органов и систем – энтеротоксемия, обусловленная Cl.perfringens, сальмонеллез;
3. инфекции с вторичным поражением желудочно-кишечного тракта - колисепсис и другие;
4. неспецифические энтериты – простая (ферментативная) и токсическая (гнилостная) диспепсия, кишечный дисбактериоз.

Многочисленные исследования ученых свидетельствуют, что желудочно-кишечные и респираторные болезни молодняка сельскохозяйственных животных имеют инфекционную природу и протекают в виде эпизоотических вспышек, причем заболевания могут вызываться как одним возбудителем, так и ассоциациями патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. Среди возбудителей авторы выделяют вирусы (рота-, корона-, аденовирусная диарея и другие), хламидии и бактерии многих родов: сальмонелла, эшерихия, цитробактер, протеус, псевдомонас, клебсиелла, пастерелла, микрококки, стафилококки, стрептококки и др. (Плященко С.И., 1991; Белопольский В.А. и соавт., 1993; Филиппов В.В., 1993; Воронин Е.С. и соавт., 1994; Гафаров Х.З. и соавт., 1996; Каврук Л.С. и соавт., 1999; Johannsen U. et al., 1980; Oropeza Aquilar M.I. et al., 1988 и др.).

Факторами, предрасполагающими к появлению желудочно-кишечной па-тологии у новорожденных животных, являются: нарушение кормления и со-держания маточного поголовья; нарушение правил и сроков выпойки молозива, выпойка новорожденным молозива и молока от матерей, больных маститом; отсутствие целенаправленной специфической профилактики желудочно-кишечных болезней; естественный дисбактериоз, присущий животным от мо-мента рождения до 20-25- дневного возраста; широкое распространение в хо-зяйствах гинекологических патологий; несоблюдение гигиены отелов (Суббо-тин В.В., 2001).Важным фактором также является концентрация большого ко-личества поголовья на сравнительно малых площадях, которая обуславливает гиподинамию (Аликаев В.А. и соавт., 1974). Отрицательно влияют на организм использование в рационе коров-матерей большого количества концентратов, накопление в кормах и воде различных химических веществ (гербицидов, про-дуктов азотистых удобрений и др.), что приводит к рождению слабого потомст-ва, снижению жизнеспособности, особенно в периоды новорожденности и молочный (Криштофорова Б.В. и соавт., 1994). Также имеются сведения, что особое значение в развитии острых расстройств пищеварения телят имеет накоп-ление в родильных отделениях и профилакториях патогенной микрофлоры до критического уровня (90-95 тыс. м.т. на м ³ воздуха) через 20-30 дней с начала эксплуатации помещения, что обуславливает повышение заболеваемости и гибель молодняка (Степанов К.В., 1990).

Основной предпосылкой для развития кишечных дисбактериозов у мо-лодняка животных является иммунодефицитное состояние, обусловленное осо-бенностями развития иммунного ответа в раннем постнатальном периоде и воз-действием внешних иммунодепрессивных факторов таких, как технологиче-ский стресс, нарушение молозивного иммунитета, чрезмерная лекарственная и антибиотиковая терапия, дефицит белков и витаминов и др. (Пинегин Б.В., 1984; Sisson J.W., 1989; Панин А.Н. и соавт., 1996; Захаров П.Г., 1998).

Ряд исследователей, изучая влияние неблагоприятных факторов на мо-лодняк животных считают, что стресс является одной из главных причин воз-никновения иммунодефицитных состояний организма. При стрессовых состоя-ниях в крови животных увеличивается концентрация кортикостероидных гор-монов, которые неблагоприятно воздействуют на естественную резистентность, вызывая ее снижение, а в частности бактерицидной, лизоцимной и фагоцитар-ной активностей сыворотки крови, что приводит к нарушению ферментативно-го пищеварения, ослаблению иммунобиологического статуса, задержке роста и развития животных, снижению продуктивности (Фурдуй Ф.И. и соавт., 1987; Соколов В.Д. и соавт., 1989).

Результатом воздействия неблагоприятных факторов является нарушение обмена веществ, что в свою очередь приводит к медленному становлению не-специфических факторов защиты, ослаблению иммунобиологической реактив-ности животных и способствует активизации и проявлению патогенного дейст-вия различной микрофлоры (Шитый Л.Г., 1987; Сидоров М.А., 1987; Сулейманов С.М. и соавт., 1989).

Некоторые авторы считают, что начальным звеном в механизме развития болезней молодняка полиэтиологической природы является резистентность организма (Данилевский В.М., 1981; Урбан В.П. и соавт., 1984; Филиппов В.В., 1993; Жаров А.В., 1995).

Приведенные данные литературы свидетельствуют о широком распро-странении заболеваний в периоде новорожденности, что в основном связано с их инфекционной природой, несоблюдением зоогигиенических норм содержа-ния молодняка и маточного поголовья. Поэтому некоторые авторы считают, что профилактические мероприятия можно разделить на два направления. М.А.Сидоров (1987) считает, что профилактические мероприятия должны быть направлены на протективные действия микробного фактора, а также создание благоприятных факторов внешней среды. Другие авторы считают, что профи-лактические мероприятия следует акцентировать на маточном поголовье так, как иммунный статус новорожденных животных находится в прямой зависимо-сти от иммунного состояния матери и только от здоровых животных можно по-лучить здоровое потомство (Федоров Ю.И., 1988; Кузьмин Г.Н., 1994).

Для лечения желудочно-кишечных болезней телят предложено большое количество схем с использованием антибиотиков, сульфаниламидных, нитро-фурановых и препаратов других лекарственных групп (Карпуть И.М. и соавт., 1984; Осипенко В.И., 1988; Абрамов С.С. и соавт., 1990; Соколов В.Д. и соавт., 1994). Однако, по данным Е.С.Воронина и соавт. (1990), Н.В. Мишурновой и соавт. (1993), Ф.П. Петрянкина и соавт. (1994) и др., известные способы профи-лактики и лечения животных при массовых желудочно-кишечных и респира-торных болезнях инфекционной этиологии путем применения химиотерапевти-ческих препаратов, а также антибиотиков широкого спектра действия оказались недостаточно эффективны, так как их действие одновременно проявляется какпротив патогенной, так и полезной микрофлоры, что ведет к развитию вторич-ных дисбактериозов и бесконкурентному размножению в желудочно-кишечномтракте условно-патогенных микроорганизмов. К тому же появляются устойчивые к антибиотикам штаммы микроорганизмов. В связи с этим большого внимания заслуживает использование в ветеринарной практике иммуномодуляторов и пробиотиков.

Высокая биологическая активность аэробных спорообразующих бактерий при полной безвредности бацилл для человека и животных, безопасности для окружающей среды явились основанием для широкого использования их апатогенных штаммов в медицинской и ветеринарной практике.

Применяемый В.В.Смирновым и С.Р.Резником (1980) пробиотик состоящий из нескольких видов живых культур аэробных спорообразующих бактерий показал высокую лечебно-профилактическую эффективность при желудочно-кишечных заболеваниях телят.

Скармливание телятам биомассы Bac. mucilaginosus способствовало повышению естественной резистентности животных и среднесуточного прироста живой массы (Виноградов Е.Я., 1981).

Хорошая эффективность установлена при применении нового пробиоти-ческого препарата Ветом-1.1, основой которого является генетически обрабо-танная масса живых антагонистически активных споровых форм бактерий рода Bac. subtilis. Препарат обладает антибактериальной и антивирусной активно-стью за счет генетической кодировки интерферона; способствует повышению неспецифической резистентности организма у всех видов животных; оказывает высокое лечебно-профилактическое действие; не вызывает побочных явлений в организме животных; не обладает канцерогенным, эмбриотоксическим, мута-генным, аллергическим и иммунотоксическими действиями. Применение дан-ного препарата при лечении телят с расстройством пищеварения повышало те-рапевтическую эффективность до 89,4% и сокращало продолжительность лече-ния на 2-3 дня. Выпаивание Ветом-1.1 с молозивом телятам в первые часы жиз-ни, способствовало снижению случаев заболеваемости желудочно-кишечнымипатологиями и повышению прироста массы тела к десятому дню жизни на 37,9% по сравнению с контролем (Иноземцев В.П. и соавт., 1998).

Хорошим лечебно-профилактическим действием при вирусных и бакте-риально-вирусных болезнях телят, поросят, собак, пушных зверей, птицы обладает пробиотик ветосубалин. Ветосубалин – ветеринарный лечебно-профилактический препарат, созданный на основе спорообразующих бактерий Bac. subtilis, продуцирующих α-2 интерферон (Новоскольцева Т.М. и соавт., 1998).

Сотрудниками Волгоградского научно-исследовательского противочум-ного института из штамма Bac. subtilis 534 (споробактерин) методом генетических рекомбинаций и селекции получены антибиотикорезистентные штаммы микроорганизмов, устойчивых к тетрациклину, рифампицину, ампициллину, левомицетину, стрептомицетину и разработаны пробиотики РАС, ТРАС и др. (Буланцев А.Л. и соавт., 1998).

И.Н.Жирков и соавт. (1999), изучая действие РАС на животных, сделали вывод о том, что пробиотик РАС является эффективным средством при дисбак-териозах у телят с симптомокомплексом диареи. Важным моментом, как отме-чают авторы, является то, что препарат обладает резистентностью к антибиоти-кам, что позволяет его применять совместно с противомикробной терапией.

Имеются сообщения об успешном применении при лечении и профилактике острых кишечных и респираторных болезней телят раннего постнатального периода пробиотика бактиспорина, состоящего из живых культур Bac. subtilis 3H, выделяющих антибактериальные вещества широкого спектра действия (Мозжерин В.И. и соавт., 2000).

М.А.Исмаилов и соавт. (1997) испытали пробиотический препарат биоспорин, который представляет собой лиофилизированную микробную массу аэробных непатогенных спорообразующих бактерий двух видов Bac. subtilisштамм ИКПМ и B. Licheniformius штамм ВКПМ 72336. Авторы изучили профилактический и лечебный эффект на новорожденных телятах и поросятах иустановили нормализацию микрофлоры кишечника к 10-15 дню за счет антаго-нистических действий биоспор в отношении условно-патогенных микроорганизмов.

Исследованиями А.А.Ивановского (1996) по применению пробиотика бактоцеллолактина при различных патологиях у животных было установлено, что препарат обладает 95-100% эффектом при диспепсии молодняка.

Исследованиями П.И.Жданова и соавт. (1990, 1994, 1995) установлено успешное применение споробактерина на взрослых животных и молодняке свиней.

Б.В. Таракановым и соавт. (1999, 2001) установлено, что применение раз-работанного ими препарата лактоамиловорина, не оказывало отрицательного влияния на организм новорожденных телят. Вместе с тем в крови у животных, получавших препарат, существенно возрастали активность лизоцима, бактери-цидная активность сыворотки крови и концентрация γ-глобулинов.

Ими же проведены исследования по определению эффективности антаго-нистического штамма Lactobacillus casei subsp. pseudoplantarum LBR 33/90 при выращивании телят. Авторами установлено, что его применение предохраняет от диареи 51-57 % новорожденных животных, а при ее возникновении ослаб-ляет тяжесть течения болезни и на 1,5-3 суток сокращает ее продолжитель-ность, повышает сохранность молодняка на 5-6 % (с 87-90,7 до 93-96,3 %).

Также в ветеринарии нашли свое применение препараты содержащие би-фидо- и лактобактерии. Они подавляют развитие патогенной микрофлоры пу-тем образования органических кислот (молочной, уксусной) и других антибио-тических веществ, повышают активную кислотность содержимого кишечника и неспецифическую резистентность организма (Гончаров Г.И., 1986; Субботин В.В., 1998). Некоторые из этих препаратов, такие как бифидумбактерин (лиофилизированная биомасса активных бифидобактерий) и лактобактерин (смесьдвух штаммов лактобактерий) применяют для профилактики и лечения желудочно-кишечных болезней телят с 90-96 % терапевтической эффективностью, а также, по мнению некоторых авторов, вводимые пробиотики продуцируют витамин В и ряд незаменимых аминокислот (Воронин Е.С., 1990; Субботин В.В. и соавт., 1998, 1999).

На основе бифидо- и лактобактерий созданы комплексные препараты бифилакт и бифимол, содержащие в своем составе производственные штаммы бифидобактерий и ацидофильную палочку. По данным В.В. Поспеловой (1986), совместное культивирование ацидофильной палочки с бифидобактериями физиологически совместимо и обеспечивает сохранение свойственного для каждого из этих штаммов бактерий роста биомассы без угнетающего воздействия дополнительного микробного компонента. Исследованиями А.В.Гудкова и соавт. (1986) установлено, что при сочетании бифидобактерий и ацидофильной палочки антагонистический эффект в отношении кишечной палочки значительно больше, чем при использовании каждой культуры в отдельности. Показано также, что ацидофильная палочка стимулирует накопление бифидобактериями антибиотических веществ. Бифилакт и бифимол показали высокую эффективность в профилактике и лечении желудочно-кишечных болезней новорожденных телят (Шубин А.А. и соавт., 1994).

В ходе исследований О.И.Кальницкой и соавт. (1994) по изучению биологических свойств 15-ти штаммов микроорганизмов, относящихся к родам Lactobacillus, Streptococcus и Bifidobacterium были выявлены наилучшие из них – Lactobacillus acidophilius ЛГ-1 и Bifidobacterium adolescentis В-1 и на их основе создан препарат бифацидобактерин. Авторами установлено, что введение в организм животных данных штаммов микроорганизмов способствует агглютинации эритроцитов и прикреплению их к эпителиоцитам тонкого кишечника телят, создавая тем самым барьер для колонизации на слизистой кишечника патогенной микрофлоры.

И.К.Титов и соавт. (1996, 1997), проводя лабораторные и производствен-ные испытания биопрепаратов лактобрила и биобактона, установили эффективность применения данных препаратов при сальмонеллезе телят.

В заключение следует отметить, что в настоящее время в сельском хозяйстве нашей страны одной из важных задач остается получение и сохранение жизнеспособного молодняка животных, так как уровень заболеваемости является высоким, а в большинстве случаев процент сохранности молодняка остается низким.

1.6. Заключение по обзору литературы

Обобщая данные изученных литературных источников можно придти к выводу о том, что в настоящее время в животноводстве нашей страны отмечена широкая распространенность акушерско - гинекологических патологий у коров и массовых желудочно – кишечных болезней среди телят, наносящих значи-тельный ущерб данной отрасли.

Это связано с трудоемкостью профилактических и лечебных мероприя-тий, а в некоторых случаях с нерациональным назначением медикаментозных средств; с антропогенной нагрузкой на организм животных; несоблюдением зоогигиенических норм содержания коров в сухостойном периоде и телят в пе-риод новорожденности; усилением изменчивости бактерий и вирусов; увеличе-нием патогенности условно – патогенных микроорганизмов таких, как бактерии группы кишечной палочки, протей, клебсиелл, стафилококков и других. Также следует отметить, что в последние годы отмечено резкое снижение терапевти-чекой эффективности антибиотиков и других бактерицидных препаратов, что проявляется появлением резистентных штаммов возбудителей и развитием множественной лекарственной устойчивости.

Исходя, из этого в настоящее время проводится много исследований поразработке, внедрению и определению эффективности лечебно – профилактических мероприятий при применении препаратов нового поколения – пробио-тиков.

Имеющиеся литературные данные свидетельствуют о многогранном и разностороннем положительном действии пробиотиков на организм животно-го-хозяина, которое опосредуется через регулирование кишечного микробного баланса (образование антибактериальных веществ и ингибирование кишечных патогенов, конкуренция за питательные вещества и места адгезии), изменение микробного метаболизма, стимуляцию иммунной системы, противораковое и антихолестеринемическое действие. Также пробиотики являются эффективны-ми лечебно-профилактическими средствами при бактериальных болезнях молодняка животных, легочных и желудочно – кишечных заболеваниях, дисбактериозах для регулирования микробиологических процессов в рубце жвачных, при акушерско - гинекологических патологиях у животных.

Многие пробиотики по эффективности действия не уступают антибиоти-кам и другим химиотерапевтическим средствам, но при этом они не влияют губительно на микрофлору желудочно – кишечного тракта.

Таким образом применение пробиотиков обеспечивает животных биологической защитой, способствует снижению процента заболеваемости и оказывает ростостимулирующее действие, повышая продуктивность животных, а также уменьшает риск контаминации животноводческой и птицеводческой продукции с возбудителями пищевых токсикоинфекций.

II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Исследования по определению эффективности применения споробакте-рина в профилактике послеродовых патологий у коров и массовых заболеваний новорожденных телят проводились в период с января 2000 г. по июнь 2002 г. в условиях кафедры эпизоотологии и микробиологии Оренбургского государственного аграрного университета и ЗАО "Алга", Октябрьского района, Оренбургской области.

Споробактерин жидкий – пробиотик (ТУ10-07-042-92), изготавливаемый на основе штамма Bacillus subtilis 534 (Жданов П.И., Никитенко В.И., 1993). Биологический препарат представляет собой взвесь 48-72-часовой культуры штамма Bacillus subtilis 534 в 1-7 % растворе натрия хлорида после смыва с плотных питательных сред с содержанием в 1 миллилитре препарата 10 млрд. микробных тел (споры и вегетативные формы) (Жданов П.И., 1992). Исследования проводились в несколько этапов (см. рис 2).

На первом этапе исследований были сформированы по принципу анало-гов (с учетом возраста и массы животных), две группы (опытная и контрольная) глубокостельных коров по 20 голов в каждой. Животные опытной группы за 1-1,5 месяца до отела ежедневно, с концентратами индивидуально получали спо-робактерин из расчета 500 млн. микробных тел на кг живой массы. Контроль-ная группа коров препарат не получала.

Коровы содержались в типовом родильном отделении и получали одина-ковый внутрихозяйственный рацион. За ними велось постоянное клиническое наблюдение с учетом общего состояния, выраженности аппетита и признаков приближающихся родов. Регистрировали процесс родов – время наступления, длительность, его тяжесть, сроки отделения последа и случаи его задержания, а также длительность лохиального периода и периода инволюции матки, время первого прихода в охоту и сервис-период. Отмечали случаи и характер проявления послеродовых осложнений (задержание последа, эндометриты, и др.)

Второй этап исследований включал проведение опытов на новорожден-ных телятах, полученных от коров опытной и контрольной групп. С этой целью сформировали четыре группы телят по 10 голов в каждой. При этом телята пер-вой и второй групп были получены от коров опытной группы, а третьей и чет-вертой - от коров контрольной группы. Первая и третья группы телят с момента рождения до трехмесячного возраста получали споробактерин с молозивом и молоком один раз в сутки, из расчета 500 млн. микробных тел на кг живой мас-сы, а животные второй и четвертой группы споробактерин не получали.

За всеми телятами с момента рождения до трех месячного возраста вели клиническое наблюдение. Регистрировали случаи их заболевания желудочно-кишечными, легочными и другими болезнями. Особенности проявления пато-логических процессов отмечали в историях болезни, где учитывали: длитель-ность и тяжесть их проявления и исход.

У всех новорожденных телят определяли массу тела: первый раз - сразу после рождения, затем ежемесячно в течение трех месяцев.

У коров перед постановкой на опыт, а затем за 1-2 дня до родов, а у телят в первый день жизни и каждые, последующие 30 дней до 3-х месячного возрас-та брали кровь для определения морфологических, биохимических показателей и факторов неспецифической резистентности.

Определение клинического состояния животных проводили по обще-принятым методикам.

Исследование морфологического состава крови осуществляли с исполь-зованием традиционных методик (Карпуть И.М., 1986).

Уровень общего белка определяли рефрактометрическим методом с использованием рефрактометра RL-2, а белковые фракции – турбиди-метрически (Кондрахин И.П., 1985).

Фагоцитарную активность нейтрофилов крови устанавливали по методуА.И. Иванова и Б.А. Чухловина (1967). В качестве тест-культуры использовали E.Coli 0₁₁₁, выращенную в течение суток на МПА.

Бактерицидную и бета-литическую активности сыворотки крови определяли по методу О.В. Бухарина и В.Л. Созыкина (1972, 1979).

Лизоцимную активность устанавливали по О.В. Бухарину (1971) с применением суточной культуры Micrococcus lysodeicticus (штамм 2665 ГКИ им. Л.А. Тарасевича).

Весь цифровой материал обрабатывался на IBM совместимом персональ-ном компьютере с помощью пакетов программ "Statgraf" и "Stat-expеrt".

III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Влияние споробактерина на организм глубокостельных коров

Характеризуя клинический статус коров, следует отметить, что основные клинические параметры животных, на стадии формирования контрольной и опытной групп, отличались близостью результатов, типичностью габитуса и незначительностью в разнице массы тела. У всех животных отмечался хороший аппетит, при 2,2-2,3 сокращений рубца за две минуты, устойчивая работа органов дыхания (20,6-22,8 дых. в минуту) и кровообращения (53,6-58,3 уд. в минуту), а также адекватная реакция на внешние раздражители (табл.2).

2. Клинические показатели коров

Показатели	Фоновые показатели		Через 30 дней после вве-дения споробактерина
	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Температура, ºС	38,2 ± 0,83	38,3 ± 0,92	38,2 ± 0,09	38,4 ± 0,89
Пульс, уд./ мин.	58,3 ± 3,08	53,6 ± 4,53	55,3 ± 3,47	49,8 ± 3,83
Дыхание, дых./мин.	22,8 ± 1,83	20,6 ± 1,73	22,6 ± 1,82	21,8 ± 2,49
Число сокращений рубца за две мин.	2,2 ± 0,53	2,3 ± 0,48	2,1 ± 0,73	2,6 ± 0,78

Коровы содержались в типовых помещениях, с однотипным рационом, предназначенным для глубокостельных самок, пользовались моционом.

Введение в рацион споробактерина существенно не повлияло на основ-ные физиологические процессы в организме коров. Хотя было замечено умень-

шение числа сокращений сердца до 49,8 ± 9,83 и количества дыхательных движений до 21,8 ± 2,49 у коров опытной группы, но увеличение руминации до

2,6 ± 0,78 мы связываем с воздействием продуктов метаболизма споробакте-рина на нервные центры, координирующие работу парасимпатического отдела нервной системы. На фоне этого отмечалась лучшая поедаемость кормов, более выраженная ответная реакция на раздражители (укол иглой, окрик и т.п.).

3.2. Изменение морфологических показателей крови коров под действием споробактерина

Известно, что эритроциты и гемоглобин определяют, прежде всего возможность переноса кислорода к тканям и двуокиси углерода из них и характеризуют интенсивность окислительно-восстановительных процессов в организме, состояние его физиологической реактивности и потенциальных возможностей.

Характеризуя динамику показателей количества эритроцитов, степени их насыщенности гемоглобином и цветного показателя, следует отметить их увеличение у коров, которые получали споробактерин. В частности, у них по сравнению с животными контрольной группы количество эритроцитов увеличилось с 6,52 ± 0,69 до 6,92 ± 0,98 x 10¹²/л, гемоглобина соответственно с 95,18 ± 2,17 до 102,14 ± 3,25 г/л, индекс красной крови с 0,83 ± 0,01 до 0,89 ± 0,02 (табл. 3).

Следовательно, повышение содержания эритроцитов и гемоглобина в крови стельных коров опытной группы под влиянием споробактерина следует рассматривать как его модулирующее действие, направленное на повышение общей неспецифической резистентности и физиологической реактивности организма.

Для оценки физиологического состояния организма большой интерес представляют данные о количестве лейкоцитов и процентному соотношению между отдельными формами белых кровяных клеток (лейкограмма).

Увеличение содержания лейкоцитов у коров опытной группы до 7,21 ±0,88, против 6,41 ± 0,72 x 10⁹/л в контроле, рассматривается нами как адаптационный процесс, направленный на модулирование неспецифических защитных факторов организма.

Лейкограмма стельных коров, длительное время получавших споробакте-рин, характеризовалась, по сравнению с контролем, меньшим содержанием в

3.Морфологические показатели крови подопытных коров.

Показатели (n=20)	Фоновые показатели		Через 30 дней после вве-дения споробактерина
	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Эритроциты,1012/л	6,42 ± 0,73	6,52 ± 0,69	6,53 ± 0,69	6,92 ± 0,98
Гемоглобин, г/л	94,23±2,24	95,18±2,17	94,12±3,18	102,14±3,25
Цветной показатель	0,86 ± 0,02	0,83 ± 0,01	0,88 ± 0,02	0,89 ± 0,02
Лейкоциты, 109/л	6,41 ± 0,85	6,52 ± 0,43	6,52 ± 0,43	7,21 ± 0,88
Лейкограмма, %: Базофилы	0,81 ± 0,19	0,94 ± 0,18	1,12 ± 0,21	0,83 ± 0,26
Эозинофилы	6,19 ± 0,27	6,23 ± 0,33	6,05 ± 0,52	4,82 ± 0,74
Нейтрофилы: Юные	-	-	-	-
Палочкоядерные	3,88 ± 0,35	3,52 ± 0,37	4,13 ± 0,54	3,42 ± 0,53
Сегментоядерные	16,22±0,54	17,51± 0,53	12,77 ± 1,05	** 18,03 ± 1,04
Лимфоциты	72,09±2,12	70,52±2,93	71,22 ± 2,83	* 68,24 ± 2,26
Моноциты	0,81 ± 0,34	1,28 ± 0,43	4,71 ± 0,49	4,66 ± 0,46

* р < 0,05; * * р < 0,01

крови палочкоядерных (3,42 ± 0,53 против 4,13 ± 0,54), эозинофилов (4,82 ±0,74 против 6,05 ± 0,52), лимфоцитов (68,24 ± 2,26 против 71,22 ± 2,83, р < 0,05), мо-ноцитов (4,66 ± 0,46 против 4,71±0,49) при одновременном увеличении сегмен-тоядерных нейтрофилов (18,03 ± 1,04 против 12,77 ±1,05, р < 0,01). Существен-ных изменений не претерпело количество базофилов (табл. 3, рис. 3).

3.3. Изменение белкового состава крови коров на фоне введения споробактерина

Общеизвестно, что белки крови весьма лабильны и им присущи разнообразные функции: пластическая, энергетическая, транспортная, защитная и другие. В связи с этим изучение белков сыворотки крови имеет большое теоретическое и практическое значение.

Нами установлено, что содержание общего белка в крови соответствует нормативным показателям и колеблется в пределах от 76,61 ± 4,73 до 79,13 ± 3,71 г/л у животных до получения споробактерина и 81,32 ± 5,62 г/л у коров получавших препарат (табл. 4, рис. 4). Некоторое увеличение общего белка в крови опытной группы свидетельствует о лучшей усвояемости протеина корма в желудочно-кишечном тракте.

4.Динамика содержания белка и его фракций в сыворотке крови коров.

Показатели	Фоновые показатели		Через 30 дней после вве-дения споробактерина
	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Общий белок, г/л	79,13 ± 3,71	76,61 ± 4,73	79,63 ± 6,93	81,32 ± 5,62
Альбумины, %	41,72 ± 3,57	42,54 ± 2,66	43,51 ± 2,67	45,46 ± 2,62
α - глобулины, %	20,68 ± 1,88	21,43 ± 2,86	18,02 ± 2,58	12,24 ± 1,73
β- глобулины, %	13,32 ± 0,45	13,21 ± 0,64	13,46 ± 0,41	15,43 ± 0,86
γ- глобулины, %	24,28 ± 1,61	22,82 ± 2,55	25,01 ± 1,83	26,87 ± 1,97

Известно, что альбумины, составляющие большую часть белков сыворот-ки крови, играют важную роль в регуляции водного обмена, в транспортировке пластических, энергетических веществ и продуктов метаболизма, в образова-нии комплексов с ядовитыми веществами и их обезвреживании. Повышение уровня альбуминов имеет определенную связь с интенсивностью окислительно-восстановительных процессов и является характерным признаком для анаболических процессов, происходящих в организме.

Определено, что у коров опытной группы уровень альбуминов в крови был равным 45,46 ± 2,62 против 43,51 ± 2,67 % в контроле. Заметим, что показатели содержания мелкодисперсного белка соответствует значениям, определенным А.П. Жуковым (1999) для красной степной породы в различных природно - климатических зонах Оренбуржья.

Более высокий уровень бета-глобулинов, образующих комплексные соединения с различными веществами, переносящих холестерин, билирубин, жирные кислоты, ионы железа и обуславливающих до некоторой степени окислительные свойства крови, определяет лучшую обеспеченность коров и их плодов питательными веществами, и в первую очередь, железом. Этим, по нашему мнению, объясняется более высокое содержание гемоглобина в крови коров опытной группы.

Наиболее важной фракцией белков сыворотки крови в иммунологиче-ском отношении являются гамма-глобулины. Более высокий их уровень у коров опытной группы (26,87 ± 1,97 против 25,01 ± 1,83 %) свидетельствует о иммуномодулирующей роли споробактерина.

3.4. Влияние споробактерина на естественную резистентность коров

Степень проявления защитных свойств животного организма к микробным агентам хорошо иллюстрирует бактерицидная активность сыворотки крови.

В наших исследованиях фоновые показатели БАСК коров находились в пределах 41,74 ± 2,25 - 42,71 ± 2,67 %, что на 3-6 % ниже результатов, которые получил А.П. Жуков (1999) у коров в различных зонах Оренбуржья. Добавка споробактерина в рацион коров опытной группы оказывала существенное влияние на выраженность БАСК. Она составляла в среднем 49,91 ± 2,49 (р< 0,05) при колебаниях от 46,3 до 53,8 %, тогда как у коров контрольной группы лимит находился в пределах 37,4 - 45,1 %.

Одним из факторов антимикробной активности сыворотки крови является термостабильный, низкомолекулярный катионный белок - бета-лизин. В отли-чие от комплемента и лизоцима спектр действия бета-лизина относительно узок и ограничивается, за немногим исключением, только грамположительными, преимущественно спорообразующими, микроорганизмами.

Полученные нами данные при изучении сывороточной активности бета-лизина указывают на ее более выраженную интенсивность, в пределах физиологической нормы. У коров опытной группы, получавших длительное время споробактерин - она была равна 46,13 ±1,93 против 42,11 ± 2,72 в контроле (табл. 5, рис. 5).

Нами установлено (табл. 5, рис. 5), что активность лизоцима в сыворотке крови коров опытной группы находилась в пределах 23,82 ±0,91 против 26,33 ± 1,37 % в контроле. Такие изменения рассматриваются нами, в системе регуля-ции иммуноструктурного гомеостаза, как адаптационное явление в организме коров опытной группы и компенсаторное - контрольной. Очевидно, у коров опытной группы на фоне более высокого уровня других защитных механизмов, таких как бактерицидная, бета-литическая не возникает потребности в интенсивной продукции лизоцима и, наоборот, снижение их у контрольных животных, стимулирует данный процесс.

5.Изменение гуморальных и клеточных факторов неспецифической защиты организма подопытных коров.

Показатели	Фоновые показатели		Через 30 дней после вве-дения споробактерина
	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
БАСК, %	42,23 ± 2,73	42,71± 2,67	41,74 ± 2,25	* 49,91 ± 2,49
Бета-литич. акт-ть, %	43,12 ± 2,56	44,53 ± 2,63	42,11 ± 2,72	46,13 ± 1,93
ЛАСК, %	25,55 ± 1,49	26,72 ± 2,41	26,33 ± 1,37	23,82 ± 0,91
ФАНК, % в том числе:	45,86 ± 3,83	47,14 ± 5,23	47,17 ± 4,04	53,44 ± 5,92
аттракция	20,03±1,61	21,61 ± 1,84	19,62 ± 1,61	21,61 ± 1,78
поглощение	17,81±1,73	17,21 ± 1,66	18,01 ± 1,73	19,71 ± 1,76
инактивация	8,02 ± 0,56	8,32 ± 0,51	9,54 ± 0,82	* 12,12 ± 0,58

* р < 0,05

Важным звеном неспецифической защиты организма считается фагоци-тарная активность микро- и макрофагов. Это связано с полипотентностью функций полиморфо-ядерных лейкоцитов и клеток мононуклеарной фагоцити-рующей системы, которые не только осуществляют фагоцитоз и ряд других специфических функций, но и являются основными продуцентами лейкинов, некоторых фракций комплемента, лизоцима, интерферона, участвуют в выработке антител, способствуют реализации иммунного ответа, играют важную роль в гуморальных опосредованных антителами иммунных реакциях, занимают одну из наиболее активных позиций в системе гуморально-клеточной кооперации.

Как видно из данных таблицы 5 показатели фагоцитарной активности у коров опытной группы под влиянием длительного применения споробактеринабыли достоверно выше таковых у контрольных животных в отношении фагоцитоза за счет поглотительной и переваривающей способности. Так, ФАНК у коров второй группы была равна 53,44 ± 5,92 % против 47,17 ± 4,04 в контроле, при аттракции 21,61 %, поглощении 19,71 % и инактивации 12,12% нейтрофилов, тогда как у контрольных животных эти показатели были равны, соответственно – 47,17 ± 4,04; 19,62 ± 1,61; 18,01 ± 1,73 и 9,54 ± 0,82 %.

Таким образом, анализ полученных данных свидетельствует о благотворном влиянии споробактерина на уровень обменных процессов коров, можно уверенно констатировать, что этот препарат обладает ярко выраженными, избирательными и в зависимости от потребности организма, иммуномодулирующими свойствами, открывающими перспективы его широкого применения в животноводстве.

3.5. Профилактическое действие споробактерина на течение послеродового периода и показатели воспроизводства коров

Очередной задачей в наших исследованиях было изучение профилактического действия споробактерина на послеродовой период у исследуемых коров. С этой целью животным опытной группы за 1-1,5 месяца до отела ежедневно с концентратами индивидуально задавали споробактерин из расчета 500 млн. микробных тел на кг живой массы, что равняется 20-25 мл препарата на голову. Поедаемость споробактерина была хорошей, побочного действия за период наблюдений не наблюдалось. Контрольная группа коров препарат не получала. После отела за животными велось клиническое наблюдение с регистрацией случаев послеродовых осложнений (задержание последа, эндометриты), а также с целью определения готовности коров к очередному циклу воспроизводства определяли степень завершенности послеродовой инволюции половых органов и функциональное состояние яичников (наличие желтых тел, фолликулов). Втечение всего периода наблюдений регистрировали время первого прихода в охоту, даты осеменений, в том числе плодотворных и продолжительность сервис-периода. Наши данные по этим вопросам отражены в таблице 6.

6.Влияния споробактерина на воспроизводительную функцию коров

Груп-пы коров n=20	Количество голов с послеродовыми осложнениями		Количе-ство плодо-творных осеме-нений	Индекс осеменения	Длительность сервис-периода	Дней бесплодия	Выбыло
	Задержание последа	Эндометрит
Опыт	1	2	20	*** 1,15±0,08	** 94,7±2,81	** 64,7±2,8	1
Контроль	9	5	15	1,89±0,15	124,6±9,5	94,6±9,5	5

** р<0,01; *** р<0,001

Из таблицы видно, что у коров опытной группы, получавших споробакте-рин, задержание последа отмечено у одного животного (5%), развитие эндометрита в 2-х случаях (10%). У животных с пятого по седьмой день послеродового периода отмечалось выделение катарального экссудата с редкими прожилками гноя, с восьмого дня из половых органов коров выделялось однородное содержимое светло – коричневого цвета, по виду напоминавшее лохии. У этих коров выздоровление наступило без дополнительного применения лекарственных препаратов.

В контрольной группе задержание последа отмечено у 9-ти коров ( 45%), развитие эндометрита у пяти коров (25%). У всех пяти коров клинико – морфо-логически воспалительный процесс в матке протекал аналогично. У животных с третьего – четвертого дня после отела выделялись лохии с примесью большого

количества гнойного экссудата. При ректальном исследовании на 8-й деньпосле отела было установлено, что матка находится в брюшной полости, ато-нична, флюктуирует, шейка матки тестообразной консистенции, влагалищной частью располагается на переднем крае лонного сращения, большой частью находясь в брюшной полости.

Заболевшим, острым послеодовым гнойно – катаральным эндометритом, коровам контрольной группы назначили симптоматическое лечение после чего на одиннадцатый и двенадцатый дни послеродового периода наступило выздоровление.

У коров, получавших споробактерин, период от отела до плодотворного осеменения составил в среднем 94,7 ± 2,81 дня при достоверной разнице р<0,01 и 100% оплодотворяемости. У коров контрольной группы этот период составил 124,6 ± 9,5 дня при 75% оплодотворяемости, оказавшись, таким образом, в 1,3 раза длиннее. Общее количество дней бесплодия в среднем в опытной группе составило 64,7 ± 2,81 дня при достоверной разнице р<0,01, а в контрольной группе 94,6 ± 9,5 дня и оказалось в 1,5 раза больше.

Индекс осеменения у животных опытной группы составил 1,15 ± 0,08 % при достоверной разнице р<0,001, а в контрольной группе - 1,89 ± 0,15%.Таким образом, пероральное применение споробактерина коровам ежедневно за 1-1,5 месяца до отела в дозе 500 млн. микробных тел на кг живой массы, оказывает благоприятное действие на течение послеродового периода. Можно также предполагать, что споробактерин оказывает стимулирующее действие на яичники коров: 100 % - оплодотворяемость при более коротком сроке от отела до плодотворного осеменения в 1,3 раза и в 1,6 раза меньшем индексе осеменения по сравнению с контролем.

3.6. Влияние споробактерина на организм подопытных телят

Наиболее распространенными в животноводстве являются болезни мо- лодняка. Потери телят до 10-дневного возраста особенно значительны. Про-грессирующий дефицит витаминов и микроэлементов отрицательно отражается не только на процессе кроветворения, но и способствует снижению резистент-ности. В результате дефицита биологически активных веществ понижается активность ферментов, возникают трофические изменения в тканях, нарушаются функции органов, что клинически проявляется анемией. Врожденная антенатальная патология способствует развитию функциональных отклонений.

Клинический статус новорожденных телят характеризовался параметра-ми и тестами, характерными для животных этой породы. Так, при рождении у телят всех четырех групп температура тела была близкой к 39,5 ⁰С, при пульсе 131,0±4,35 – 143,7±2,19 удара в минуту и 37,2±2,0 – 40,2±1,44 дыхательных движений в минуту (табл.7). У всех телят была выраженная пищевая мотива-ция, достаточной силы сосательные движения, устойчивое положение в пространстве через 6-8 часов после рождения. Масса тела телят, полученных от коров опытной группы, была на 6-10% больше чем у сверстников от коров контрольной группы. На 3-5 сутки жизни отмечены случаи диспепсии у одного теленка первой группы, трех телят второй группы, двух телят третьей и семи телят четвертой группы (табл. 8). Назначив всем животным голодную диету и проведя симптоматичное лечение, добились выздоровления телят в I, II, III группах, а в IV - из семи голов пало три.

Через месяц после рождения обозначилась тенденция на различия в пока-зателях температуры, пульса и дыхания. Так, телята I-II групп дышали реже на три дыхательных движения в минуту, на пять ударов меньше регистрировали пульс по сравнению со сверстниками, полученными от коров контрольной группы (табл. 7). Температура тела у всех телят была близка к 38,6 ºС.

За первый месяц жизни телята из I-II группы имели на 8-10% больше привеса, чем животные III-IV группы. На втором месяце жизни четыре теленка четвертой группы переболели острым гастроэнтеритом. Во второй группе у четырех, третьей группе у одного, четвертой группе у трех животных отмечены признаки бронхопневмонии.

Проведенные комплексные лечебные мероприятия позволили купировать заболевания, но животные за этот период имели меньшие темпы прироста массы тела и возросла себестоимость их содержания и кормления. Показатели клинического статуса телят третьей и четвертой групп характеризовались в совокупности (табл. 7) большей температурой тела на 0,3 ºС, частым пульсом на 6-9 ударов в минуту и частым дыханием - 29 против 25 дыхательных движений в минуту в контроле (р<0,01). Конец второго месяца развития телят характеризовался динамичным и устойчивым функционированием всех жизненно важных органов и систем у телят получавших споробактерин. Телята первой, второй и третьей группы отмечались хорошим аппетитом, имели лучшие привесы, особенно в четвертой группе (табл. 7), у них, как правило, не регистрировали заболевания, кроме функциональных расстройств. Животные четвертой группы по прежнему имели более высокие показатели температуры, пульса и дыхания, у теленка № 1373 отмечалось ухудшение состояния в силу обострения в развитии катаральной бронхопневмонии. У животных отмечалась отдышка смешанного типа, хрипы в верхушечных и сердечных долях левого легкого, регистрировали влажный кашель, болезненность при пальпации грудной стенки, повышение температуры тела до 40,3 ⁰С. Теленок имел изменчивый аппетит, отставал в росте.

К концу третьего месяца телята I-IV групп характеризовались устойчи-вым ростом и развитием. Хорошая пищевая мотивация, устойчивое функциони-рование всех систем позволили получать стабильные привесы. Температура, пульс и дыхание находились в пределах физиологических параметров для животных этой возрастной группы (табл. 7). В контрольной группе один теленок пал от бронхопневмонии, остальные развивались с некоторым отставанием в росте и развитии от телят, получавших споробактерин (табл. 8).

7.Клинические показатели телят.

Возраст	Группы (n=10)	Показатели
		Температура, ºС	Пульс, уд./мин	Дыхание, уд./мин
Новорожденные	I	39,2±0,07	142,1±2,34	37,2±2,0
	II	39,5±0,16	143,7±2,19	37,8±1,39
	III	39,0±0,16	131,0±4,35 *	38,1±1,26
	IV	39,1±0,32	143,6±2,65	40,2±1,44
I месяц	I	38,6±0,135	83,9±1,56 *	25,1±0,71 **
	II	38,64±0,26	87,6±1,65	25,1±1,02 **
	III	38,82±0,13	89,3±1,21	28,1±0,86
	IV	38,9±0,18	90,2±3,04	29,3±0,94
II месяц	I	38,7±0,09	74,1±3,16	20,8±0,9 ***
	II	38,2±0,38	79,7±2,4	22,0±0,98 **
	III	38,7±0,11	78,7±2,72	24,8±0,76
	IV	39,3±0,41	80,4±2,39	26,9±0,95
III месяц	I	38,2±0,09	72,7±1,67 **	20,2±0,92 **
	II	38,5±0,27	76,5±2,52 **	20,3±0,67 **
	III	38,2±0,14	78,8±1,98 *	21,1±0,87 **
	IV	38,9±0,31	86,5±2,85	24,3±0,54

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

8.Влияние споробактерина на заболеваемость и сохранность телят

Показатели	Возраст телят	Группы телят
		I	II	III	IV
Количество животных	Новорожденные	10	10	10	10
	30 дней	10	10	10	7
	60 дней	10	9	10	7
	90 дней	10	9	10	6
Заболеваемость жел-киш болезнями	1-30 день	1	3	2	7
	31-60 день				4
	61-90 день				3
Заболеваемость жел-киш болезнями	1-30 день		2
	31-60 день		4
	61-90 день		3		2
Сохранность через 90 дней		100%	90%	100%	60%
Выбыло			1		4

3.7. Анализ показателей крови новорожденных телят

Знание гематологического статуса в разные периоды развития организма, его коррекция ведет к созданию определенных условий жизни на всех этапах онтогенеза и, тем самым, способствует повышению продуктивности и других важных качеств, уяснению генеза ее клеточных элементов, облегчает понимание причин возникновения в постнатальном периоде различных заболеваний. Для правильной интерпретации картины крови при подобных и других патологиях необходимо, прежде всего, знать возрастные особенности как количественных, так и качественных показателей крови развивающегося организма на различных этапах онтогенеза.

Анализ полученных морфологических показателей крови новорожденных телят свидетельствует о лучшем функционировании органов гемопоэза у телят первой группы, которые были получены от коров получавших на последнихмесяцах стельности споробактерин (табл.9). У телят этой группы были предпочтительные результаты по количеству эритроцитов (7,23±1,28 против 5,82±1,15 10¹²/л в контроле), лучшей их насыщенностью гемоглобином (112,71±5,73 против 103,84±6,34 г/л в контроле), более значимыми показателями в содержании лейкоцитов (7,81±1,26 против 6,72±1,27 10 ⁹/л в контроле). У всех животных гемограмма была нейтрофильного типа, у телят первой группы с преобладанием зрелых форм, а в контроле юных и палочкоядерных нейтрофилов (табл.9, рис.7).

9.Фоновые морфологические показатели крови новорожденных телят (n=10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Эритроциты,1012/л	7,23 ± 1,28	6,03 ± 1,22	5,71 ± 1,24	5,82 ± 1,15
Гемоглобин, г/л	112,71 ± 5,73	106,13 ±4,26	106,72±5,43	103,84±6,34
Цветной показатель	0,93 ± 0,03	0,97 ± 0,01	1,01 ± 0,042	0,95 ± 0,023
Лейкоциты,109/л	7,81 ± 1,26	6,71 ± 1,26	6,9 ± 1,25	6,72 ± 1,27
Лейкограмма,%: Базофилы	0,11 ± 0,11	0,33 ± 0,21	0,33 ± 0,21	0,32 ± 0,12
Эозинофилы	5,55 ± 0,4	*** 4,12± 0,04	5,57 ± 0,37	3,68 ± 0,43
Нейтрофилы: Юные	1,12 ± 1,3	2,53 ± 0,46	4,51 ± 0,51	7,22 ± 0,36
Палочкоядерные	16,14 ± 0,91	15,26 ± 1,2	16,48 ± 1,23	15,51 ± 1,16
Сегментоядерные	34,11 ± 2,28	** 35,52± 3,73	33,93 ± 2,54	26,84 ± 5,42
Лимфоциты	38,43 ± 2,3	38,01 ± 4,65	35,11 ± 2,4	40,91 ± 2,48
Моноциты	4,54 ± 0,47	4,23 ± 0,42	4,19 ± 0,76	5,52 ± 0,45

* * р < 0,01; * * * р < 0,001

Анализ полученных данных о содержании общего белка в сыворотки крови новорожденных телят свидетельствует о том, что телята 3 и 4 групп имеют очень низкий его стартовый уровень, уступая более 10 г/л животным, матери которых ежедневно получали споробактерин.

Содержание альбуминов в крови новорожденных телят первой и второй групп было равно 52,0±2,63 и 54,48±2,62 % против 50,5±2,46 и 57,6±2,07 %, причем содержание среднедисперсных белков было примерно равным, а гамма-глобулинов с двухкратным перевесом у телят, полученных от коров опытной группы (табл. 10, рис. 8).

10.Динамика содержания белка и его фракций в сыворотке крови новорожденных телят (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Общий белок, г/л	* 54,51 ± 3,76	* 53,73 ±2,01	43,85 ± 1,98	43,91 ± 2,81
Альбумины, %	54,45 ± 2,62	52,04 ± 2,63	52,46 ± 2,46	57,61 ± 2,07
α –глобулины, %	20,41 ± 1,06	22,24 ± 1,02	23,71 ± 1,37	20,54 ± 1,45
β-глобулины, %	15,02 ± 0,73	15,51 ± 0,76	15,92 ± 0,92	15,67 ± 0,62
γ-глобулины, %	** 10,12 ± 0,82	** 10,21 ± 1,14	7,91 ± 0,75	6,18 ± 0,86

* р < 0,05; * * р < 0,01

Клеточные и гуморальные факторы естественной резистентности имеют-ся уже при рождении теленка, однако, эта система остается толерантной и не будет функционировать, если не произойдет ее активация молозивом. Особенно мощной является самая древняя в филогенетическом плане форма защиты – система фагоцитоза. Фагоцитоз обеспечивает фиксированные клетки макрофа-гальной фагоцитирующей системы и блуждающие (лейкоциты и гистиоциты). Количество фагоцитов у новорожденных на единицу массы значительно больше, чем у взрослых животных и реактивность их в 6-8 раз выше.

11.Гуморальные и клеточные факторы неспецифической защиты организмановорожденных телят (n=10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
БАСК, %	12,62 ± 0,29	10,43 ± 0,52	10,52 ± 0,34	10,31 ± 0,35
Бета- литич.акт-ть, %	16,61 ±0,36	16,15 ± 0,52	15,46 ± 0,3	15,54 ± 0,38
ЛАСК, %	9,88 ± 0,74	8,33 ± 0,59	8,28 ± 0,66	8,22 ± 0,65
ФАНК, % в том числе:	42,35 ± 3,26	41,31 ± 2,97	41,96 ± 3,18	42,21 ± 2,18
аттракция	27,21 ± 0,89	28,46 ± 1,35	28,03 ± 1,24	28,65 ± 1,37
поглощение	10,43 ± 0,82	8,74 ± 0,63	9,42 ± 0,47	8,62 ± 0,64
инактивация	4,71 ± 0,65	4,11 ± 0,55	4,51 ± 0,45	4,94 ± 0,75

Именно этим законом индивидуального развития подчинено распределение клеточных и гуморальных факторов неспецифической защиты у наблюдаемых новорожденных телят (табл.11; рис.9). Мощная линия фагоцитарной защиты из макро- и микрофагов, практически равная по активности нейтрофилов во всех группах телят – 41,31±2,97% - 42,35±3,26%, но с небольшим превалированием у опытных животных, фазы поглощения микроорганизмов (10,43±0,82 против 8,62±0,64% в контроле) полиморфоядерными клетками крови. Телята опытной группы при рождении имели более высокие показатели БАСК (12,62±0,29 против 10,31±0,35 в контроле) бета-литическая активности (16,61±0,36 против 15,54±0,38), ЛАСК (9,88±0,74 против 8,22±0,65).

3.8. Изменения показателей крови месячных телят

Морфологические показатели крови телят, через месяц после начала эксперимента, претерпевают изменения свойственные ее раннему онтогенезу. Было замечено некоторое уменьшение количества эритроцитов в крови телят первой группы и незначительное увеличение их у телят 1-3 групп (табл. 12). Снизилась концентрация гемоглобина на 1-6 г/л по всем группам телят, умень-шилось количество лейкоцитов на 0,7-1,1 х 10⁹/л. В гемограмме выражена тенденция в модификации нейтрофильного типа в лимфоцитарный, т.к. сумма гетерофагов была уже меньше чем лимфоцитов. В крови телят контрольной группы регистрировали 3,2±0,28 % юных форм нейтрофилов, сумма полиморфо-ядерных клеток была равна численности лимфоцитов (табл. 12, рис. 10).

12.Морфологические показатели крови телят через месяц после начала эксперимента (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Эритроциты, 1012/л	6,71 ± 0,82	6,64 ± 0,19	6,51 ± 0,75	6,05 ± 0,97
Гемоглобин, г/л	* 106,73 ± 2,83	* 104,51 ± 2,84	* 105,44 ± 1,94	96,96±2,99
Цветной показатель	0,97 ± 0,03	0,94 ± 0,03	0,88 ± 0,024	0,93 ± 0,03
Лейкоциты, 109 /л	6,27 ± 0,14	6,27 ± 0,14	6,22 ± 0,15	5,91 ± 0,12
Лейкограмма,%: Базофилы	-	-	-	-
Эозинофилы	2,21 ± 0,47	2,01 ± 0,43	2,12 ± 0,46	2,01 ± 0,33
Нейтрофилы: Юные	-	-	-	3,11 ± 0,28
Палочкоядерные	*** 3,51 ± 0,62	*** 2,88 ± 0,57	** 3,24 ± 0,69	8,84 ± 0,66
Сегментоядерные	33,32 ± 2,09	35,72 ± 2,6	37,16 ± 1,91	35,72±2,06
Лимфоциты	59,34 ± 2,57	** 57,83 ± 2,75	* 55,91± 3,0	48,81 ± 2,4
Моноциты	1,6 ± 0,52	1,5 ± 0,42	1,5 ± 0,47	1,5 ± 0,4

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

Динамика содержания белка и его фракции в крови одномесячных телят характерны для общепринятых норм онтогенеза, характеризующаяся увеличением количества общего белка, двукратной прибавкой иммуноглобулинов, но уменьшением альбуминов и β-глобулинов (табл.13,рис.11). Все преобразования в последующие месяцы жизни телят мало значимы, поэтому первый месяц жизни телят ознаменован приобретением индивидуального белкового статуса, прежде всего за счет стабилизации гамма-глобулиновой фракции.

13.Динамика содержания белка и его фракций в сыворотке крови месячных телят (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Общий белок,г/л	59,62 ± 3,53	* 57,95 ± 2,07	56,62 ± 2,14	50,25 ± 3,83
Альбумины, %	44,34 ± 4,46	45,94 ± 3,49	44,56 ± 3,64	39,15 ± 2,23
α –глобулины, %	* 16,22 ±1,07	14,21 ± 0,92	* 15,01 ± 1,23	26,71 ± 0,55
β-глобулины, %	18,31 ± 0,67	18,92 ± 0,7	17,61 ± 0,61	18,01 ± 0,75
γ-глобулины, %	* 21,13 ± 0,83	* 20,93 ± 0,97	** 22,82 ± 1,04	16,13 ± 0,88

* р < 0,05; * * р < 0,01

Через месяц после рождения у телят всех групп отмечена значительная активация гуморальной линии защиты. Так, бактерицидная активность сыворотки крови увеличилась в первой опытной группе с 12,62±0,29 до21,04±1,05%, почти двукратная прибавка замечена у телят, которые получали споробактерин. В контрольной группе данный показатель увеличился с 10,31±0,35 до 18,82±0,78%. Не изменилась бета-литическая активность сыворотки крови телят (табл. 14; рис. 12). Лизоцимная активность телят стала выше на 2-2,5%, фагоцитарная активность нейтрофилов по опытным группам изменилась неодинаково, так телята получающие споробактерин ежедневно имели увеличение этого показателя с 42,35±3,26% до 47,43±2,4% (р<0,05) в первой группе и с 41,96±3,18 до 48,94±2,06 % (р<0,01) в третьей группе.Не изменилась ФАНК у телят опытной группы, а в контрольной установлено уменьшение этого показателя до 38,96±1,65%. У всех телят регистрировали снижение аттракции, но более высокую степень поглощения и, особенно, инактивации, которая возросла у телят опытных групп почти двукратно (табл. 14).

14.Гуморальные и клеточные факторы неспецифической защиты организма месячных телят (n=10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
БАСК, %	21,04 ± 1,05	20,32 ± 0,69	20,62 ± 1,06	18,82 ± 0,78
Бета-литич.акт-ть, %	16,71 ± 0,84	15,01 ± 0,64	16,44 ± 0,88	14,93 ± 0,75
14,93 ± 0,75	11,55 ± 0,72	10,13 ± 0,68	11,31 ± 0,85	9,55 ± 0,77
ФАНК, % в том числе:	* 47,43 ± 2,41	43,21 ± 1,62	** 48,94 ± 2,06	38,96 ± 1,65
аттракция	24,02 ± 1,61	21,03 ± 0,87	24,61 ± 1,8	22,22 ± 0,79
поглощение	* 13,94 ± 1,18	12,63 ± 0,76	** 13,51 ± 0,65	10,71 ± 0,65
инактивация	9,47 ± 0,73	9,55 ± 0,75	10,82 ± 0,55	6,03 ± 1,87

* р < 0,05; * * р < 0,01

3.9. Изменение показателей крови двухмесячных телят

Онтогенез периферической крови двухмесячных телят был свойственен данной возрастной группе животных, который характеризовался тем, что его максимальные параметры зарегистрированы у телят получавших споробактерин. Это проявлялось оптимальным соотношением количества эритроцитов и степенью их насыщенности гемоглобином (цветной показатель в опыте 0,98 против 0,83 в контроле) (табл.15). На фоне максимального насыщения крови лейкоцитами отмечалось типичное перераспределение его состава, которое характеризовалось выраженным лимфоцитарным типом в соотношении: 63,3 лимфоцитов к 29,7% нейтрофилов, против 56,4 к 31,4 %, соответственно у телят контрольной группы (табл.15, рис. 13).

Телята первой группы, которые уже два месяца получали споробактерин имели лучшие показатели крови, чем их интактные сверстники. У них обнаружено в крови больше эритроцитов на 9,1 %, гемоглобина на 9,6 %, лейкоцитов на 9,7%. Лейкограмма телят этой группы была лимфоцитарного типа, с более оптимальным соотношением лимфоцитов и нейтрофилов, чем у контрольных животных.

15.Морфологические показатели крови телят через два месяца после начала эксперимента (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Эритроци-ты,1012/л	6,87 ± 1,27	6,18 ± 1,21	6,68 ± 0,82	6,08 ± 0,91
Гемоглобин, г/л	107,13 ± 1,97	104,91 ± 2,11	103,74 ± 3,32	100,11 ± 3,06
Цветной показа-тель	0,98 ± 0,03	0,93 ± 0,031	0,87 ± 0,032	0,83 ± 0,03
Лейкоциты, 109/л	6,98 ± 0,64	6,5 ± 0,45	6,3 ± 0,87	6,14 ± 0,73
Лейкограм-ма,%: Базофилы	-	-	-	-
Эозинофилы	2,24 ± 0,4	2,02 ± 0,42	2,21 ± 0,5	2,01 ± 0,49
Нейтрофилы: Юные	-	-	-	-
Палочкоядерные	* 3,91 ± 0,8	** 3,54 ± 0,74	** 3,76 ± 0,77	6,52 ± 0,65
Сегментоядерные	26,82 ± 1,9	27,88 ± 2,62	27,58 ± 2,14	26,71 ± 2,4
Лимфоциты	65,22 ± 2,89	64,95 ± 2,94	64,52 ± 2,5	62,87 ± 2,4
Моноциты	1,81 ± 0,42	1,61 ± 0,22	1,93 ± 0,46	1,89 ± 0,22

* р < 0,05; ** р < 0,01

16.Динамика содержания белка и его фракций в сыворотке крови двухмесячных телят (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Общий белок,г/л	*** 67,61±1,32	** 63,15±2,12	*** 64,71±1,42	52,61 ± 1,98
Альбумины, %	43,52 ± 2,94	41,21 ± 3,45	42,54 ± 2,83	40,73 ± 2,48
α –глобулины, %	*** 18,46±0,73	23,72 ± 0,93	** 19,11 ± 0,74	24,52 ± 0,96
β-глобулины, %	16,81 ± 0,89	16,11 ± 0,87	16,52 ± 0,93	15,81 ± 0,98
γ-глобулины, %	21,21 ± 0,99	18,96 ± 1,87	21,83 ± 1,01	18,94 ± 1,79

* * р < 0,01; * * * р < 0,001

Из данных таблиц 16 следует, что наивысшие показатели по общему бел-ку, альбуминам имеют телята, потреблявшие споробактерин. Так, в сыворотке крови двухмесячных телят из контрольной группы общего белка содержалось 52,61±1,98 г/л., а телята, полученные от коров - аналогов по два месяца полу- чавших споробактерин имели в крови на 12,1 г/л больше общего белка, всеголишь незначительно уступая представителям телят III группы (табл.16;рис.14). Таким образом, при одинаковых стартовых возможностях, введение телятам в рацион споробактерина позволяет существенно повысить уровень обменных процессов и, прежде всего, азотистого.

У двухмесячных телят установлен динамический прирост БАСК и бета-литической активности сыворотки крови с практически не изменившимися показателями ЛАСК. Так, БАСК у телят первой группы был равным 30,41±1,97 против 21,43±1,46 (р<0,01) в контроле (табл.17, рис.15). Бета-литическая активность крови заметно увеличилась у телят первой группы, с 16,71±0,84 до 26,12±2,12 % за месяц жизни, такой же прирост имели телята третьей группы. Наиболее существенна была разница (р<0,001) в показателях у телят первой и четвертой групп (26,12±2,12 против 18,91±1,06%). ФАНК у телят опытных групп установлена с интервалом показателей с 44,21±2,23 до 52,82±2,15, против 40,74±2,3 (р<0,05) в контрольной группе.

17.Гуморальные и клеточные факторы неспецифической защиты организмадвухмесячных телят (n=10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
БАСК, %	** 30,41±1,97	26,11±1,77	** 29,67±1,73	21,43±1,46
Бета-литич.акт-ть, %	*** 26,12±2,12	19,42±1,04	** 26,33±1,86	18,91±1,06
ЛАСК, %	* 12,96±0,79	11,93±0,67	12,84±0,76	10,31±0,79
ФАНК, % в том числе:	* 49,96±2,2	44,14±2,23	** 52,98±2,15	40,74±2,3
40,74±2,3	22,11±2,4	18,82±1,49	* 26,34±1,83	20,71±1,44
поглощение	* поглощение	15,41±0,93	15,51±1,26	13,62±0,87
инактивация	*** инактивация	9,91±0,67	*** 11,13±0,58	6,41±0,56

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

3.10. Характеристика показателей крови трехмесячных телят

Анализ морфологических показателей крови трехмесячных животных показал благотворное влияние споробактерина на количество и качество как красной, так и белой крови (табл. 18, рис.16). Телята получавшие ежедневно споробактерин имели на 17-19% больше эритроцитов, на 15% гемоглобина, на 18% лейкоцитов, как было уже отмечено выше они имели хорошие привесы, не болели. Мы считаем, что очень важно именно в этом возрасте иметь гомеостаз на достаточно высоком и стабильном уровне, так как у животных этой возрастной группы происходит активная смена типа кормления, как следствие – резко увеличиваются размеры преджелудков, налаживается ферментативная переработка грубых кормов, отмечается активная перестройка гемодинамики, увеличивается систематический объём крови. В этом возрасте у телят неспецифические механизмы защиты организма в основном сформированы.

18.Морфологические показатели крови телят через три месяца после начала эксперимента (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Эритроциты, 1012/л	7,31 ± 0,85	6,26 ± 0,77	7,22 ± 0,77	6,13 ± 0,9
Гемоглобин, г/л	** 108,11 ± 1,83	** 105,23± 2,86	*** 107,61 ± 1,33	93,88 ± 1,1
Цветной показатель	0,92 ± 0,04	0,92 ± 0,04	0,92 ± 0,03	0,84 ± 0,05
Лейкоциты, 109/л	7,42 ± 0,89	6,38 ± 0,94	7,11 ± 0,83	6,24 ± 0,89
Лейкограмма,%: Базофилы	-	-	-	-
Эозинофилы	3,35 ± 0,69	3,76 ± 0,74	3,61 ± 0,63	3,64 ± 0,68
Нейтрофилы: Юные	-	-	-	-
Палочкоядерные	** 4,11 ± 0,62	** 4,62 ± 0,79	** 3,65 ± 0,83	8,55 ± 0,72
Сегментоядерные	22,73 ± 2,32	22,91 ± 2,23	23,38 ± 1,99	23,86 ± 1,82
Лимфоциты	* 67,58 ± 3,58	66,82 ± 3,36	67,25 ± 3,39	62,14 ± 3,24
Моноциты	2,23 ± 0,59	1,89 ± 0,42	2,11 ± 0,6	1,81 ± 0,22

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

Из данных таблицы № 19 видно, что протеинограмма трехмесячных телят была схожа с показателями двухмесячных телят с незначительным уменьшением общего белка в опытных группах и увеличением в контроле. В свою очередь отмечено повышение количества альбуминов. В общем можно отметить то, что проведенные исследования показали, что телята, обработан-ные споробактерином, имели в сыворотке крови на 1/3 больше гамма – глобу-линов, чем интактные животные (табл.19,рис.17). Подобное наблюдал П.И. Жданов (1996), проводя аналогичные исследования на 8-ми месячных свиньях.

19.Динамика содержания белка и его фракций в сыворотке крови трехмесячных телят (n =10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
Общий белок, г/л	** 66,72 ± 2,23	62,24 ± 2,37	* 64,41 ± 2,91	56,45 ± 2,43
Альбумины, %	45,11 ± 1,72	45,48 ±1,71	43,81 ± 1,75	45,77 ± 1,89
α –глобулины,%	** 15,13 ± 0,98	** 16,07 ± 1,14	** 15,56 ± 1,04	21,53 ± 1,07
β-глобулины, %	17,64 ± 1,0	16,42 ± 0,95	16,92 ± 1,08	16,14 ± 0,94
γ-глобулины, %	* 22,12 ± 1,28	* 22,03 ± 1,38	** 23,71 ± 1,16	16,56 ± 1,34

* р < 0,05; * * р < 0,01

Характеризуя, тенденции в становлении реактивности трех месячных телят следует отметить окончательное формирование, как гуморальных, так и клеточных факторов неспецифической защиты организма животных (табл.20; рис.18).

20.Гуморальные и клеточные факторы неспецифической защиты организматрехмесячных телят (n=10).

Показатели	Группы коров
	I	II	I	II
	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх	x ± Sх
БАСК, %	** 33,91 ± 2,31	27,41±1,44	* 32,44 ± 2,6	24,21 ± 1,22
Бета-литич.акт-ть,%	** 28,43 ± 1,92	22,93±1,44	** 28,15 ± 2,06	19,92 ± 1,4
ЛАСК, %	14,56 ± 0,89	11,91 ± 0,86	14,21 ± 0,94	11,74 ± 0,86
ФАНК, %	* 52,15 ± 2,72	47,78 ± 2,47	* 50,38 ± 2,23	41,45 ± 2,4
в том числе: аттракция	* 25,93 ± 1,87	22,12 ± 1,63	22,33 ± 1,97	20,31 ± 1,25
поглощение	15,01 ± 0,82	15,41 ± 0,87	14,84 ± 0,99	14,42 ± 0,86
инактивация	** 11,21 ± 0,68	** 10,25 ± 0,63	*** 13,21 ± 0,51	6,72 ± 0,78

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

За три месяца посленатального онтогенеза бактерицидная активность сыворотки крови увеличилась в три раза по опытным группам телят и в два раза по контрольной. Бета-литическая активность сыворотки крови телят опытных групп увеличилась за это время в 1,7-1,8 раза, против 1,2 в контроле, лизоцимная активность - в 1,5-1,7 раза в опытных группах и в 1,4 раза - у телят контрольной группы. Фагоцитарная активность нейтрофилов крови за три месяца претерпела незначительные изменения, увеличившись по опытным группам в 1,2 раза и оставшись без изменений в контрольной группе. Основные изменения зафиксированы в проявлении фаз фагоцитоза, если у новорожденных животных была более выраженной фаза аттракции, то у трехмесячных телят - фаза поглощения и инактивации.

Таким образом, анализ проведенных исследований вновь показывает благотворное влияние споробактерина на становление основных факторов неспецифической защиты организма телят, на более высокие параметры морфологического состава крови. Все это позволило животным опытных групп лучше развиваться, быть более устойчивыми к неблагоприятным воздействиям внешней среды.

3.11. Влияние споробактерина на прирост живой массы телят

В наших исследованиях для решения поставленной задачи проводилось определение живой массы телят: первый раз – сразу после рождения, а затем в течение трех месяцев. В последующем проводился расчет прироста живой массы в граммах и абсолютного прироста в килограммах. Анализируя полученные данные, следует отметить, что при рождении масса тела телят, полученных от коров опытной группы, была на 6-10 % больше, чем у телят от коров контрольной группы.

Через месяц после рождения телята I-II групп имели на 8-10 % больше привеса, чем животные III-IV группы. Так, среднесуточный прирост составил в I группе 148,0±12,6 (р<0,001); II группе - 173,0±14,1 (р<0,001); III группе - 105,1±15,3; IV группе - 66,7±10,3 (табл. 21; рис. 19).

При оценке данных показателей к концу второго месяца развития телят можно отметить, что живая масса телят I – III групп, получавших споробактерин, была больше на 24,6-26,8%, чем у телят II – IV группы (табл. 21; рис.23).

К концу третьего месяца развития животных отмечается достоверное уве-личение живой массы у телят. Так, среднесуточный прирост живой массы к 90дню жизни в среднем составил в I группе 438,3±5,26 (р<0,001); II группе 225,0±11,0 (р<0,01); III группе 376,0±9,76 (р<0,001); IV группе 155,5±15,8 и

21.Влияние споробактерина на прирост живой массы телят

Показатели	Возраст телят	Группы телят
		I	II	III	IV
Живая масса, кг	Новорожденные	35,7 ± 0,73	34,7 ± 0,49	35,0 ± 0,52	34,8±0,5
	30 дней	** 40,1 ± 0,77	*** 39,9 ± 0,33	* 38,0 ± 0,31	36,7±0,44
	60 дней	*** 56,1 ± 1,14	** 42,3 ± 0,35	*** 50,4 ± 1,39	36,9±1,36
	90 дней	*** 75,1 ± 1,04	* 51,6 ± 2,03	*** 68,6 ± 0,76	41,9±3,51
Среднесуточный прирост живой массы, г	30 дней	*** 148 ± 12,6	*** 148 ± 12,6	105,1±15,3	66,7±10,3
	60 дней	*** 341 ± 24,8	127,5 ± 5,7	*** 301 ± 23,0	99,2±17,0
	90 дней	*** 438,3±5,26	** 225 ± 11,0	*** 376 ± 9,76	155,5±15,8
Абсолютный прирост, кг	30 дней	*** 4,45 ± 0,38	*** 5,2 ± 0,42	*** 3,15 ± 0,45	1,9±0,31
	60 дней	*** 20,5 ± 1,5	7,65 ± 0,34	*** 18,1 ± 1,38	5,9±1,0
	90 дней	*** 39,5 ± 2,72	** 20,3 ± 0,98	*** 33,8 ± 0,88	14,0±1,25

* р < 0,05; * * р < 0,01; * * * р < 0,001

соответственно был выше по сравнению с контролем в 2,8 раза в I группе; 1,4 раза во II группе; 2,4 раза в III группе (табл. 21; рис.23).

Делая заключение по данному разделу можно отметить, что назначение споробактерина создает условия для постоянного наличия в желудочно-кишечном тракте большого количества молодых клеток Bac. subtilis 534, что оказывает на организм телят благоприятное воздействие. Эффективность применения препарата была наиболее высокой при его ежедневном и длительном назначении. Препарат повышает прирост массы тела животных в среднем на 50%.

IV. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ СПОРОБАКТЕРИНА

В настоящее время деятельность ветеринарной службы направлена на повышение эффективности ветеринарных мероприятий, позволяющих уменьшить заболеваемость и падеж животных, повысить их продуктивность, снизить сроки переболевания животных, повысить качество продукции и сырья животного происхождения, не допустить их порчи, создать здоровые стада животных.

Для расчета экономической эффективности применения споробактерина мы использовали данные, указанные в таблице 22.

Формулы расчета:

У₁ = М х (В_З-В_Б) х Т х Ц, где

У₁- ущерб от снижения продуктивности;

М – количество заболевших животных;

В_З – продуктивность здоровых животных;

В_Б – продуктивность больных животных;

Т – продолжительность болезни в днях;

Ц – закупочная цена единицы продукции;

У₂ = МБ х (ТБ-ТЗ) х С_П

ТП+Т_З

У₂ – ущерб от бесплодия животных;

М – количество бесплодных животных;

Т_Б – продолжительность послеродового периода у больных животных в днях;

Т_З – продолжительность послеродового периода у здоровых животных в днях;

Т_П – продолжительность беременности в днях;

С_П – стоимость новорожденного теленка;

С_П = 3,61 х Ц;

У₃ = М х (С_П + В_П х Т х Ц) – С_Ф

У₃ – ущерб от падежа животных;

В_П – среднесуточная продуктивность;

С_Ф – прибыль от продажи продуктов убоя в руб;

У₀ = У₁ + У₂ +У₃

У₀ – общий ущерб;

П_У = У₀ (конт.) – У₀ (опыт)

П_У – предотвращенный ущерб;

Э_В = П_У - З_В

Э_В – экономический эффект;

З_В – затраты на ветеринарное обслуживание;

Э_Р = Э В

З _В

Э_Р – экономическая эффективность на рубль затрат.

22.Данные для проведения расчета экономической эффективности применения споробактерина

Показатели	Опытная группа	Контрольная группа
Продуктивность на одну фуражную корову, кг	3005	3010
Средняя цена реализации 1 ц. молока, руб.	500	500
Закупочная цена 1 кг живой массы телят, руб	50	50
Количество животных с сервис-периодом выше нормы	3	20
Количество животных с послеродовыми осложнениями	3	14
Продолжительность сервис-периода, дней	94	124
Смертность молодняка в течение первого месяца жизни	0	4

Результаты расчета для исследуемых коров:

23. Результаты расчета предотвращенного ущерба, руб

Показатели	Опытная группа	Контрольная группа
У1	1125	5250
У2	1100,1	10772,7
У0	2225,1	16022,7
ПУ	13797,6	-

24. Результаты расчета экономической эффективности, руб

Показатели	Опытная группа	Контрольная группа
ЗВ	4200	-
ЭВ	9597,6	-
ЭР	2,28	-

Результаты расчета для исследуемых телят:

25. Результаты расчета предотвращенного ущерба, руб

Показатели	I группа	II группа	III группа	IV группа
У1	140	700	420	1400
У3	0	2015	0	8060
У0	140	2715	420	9460
ПУ	9320	6745	9040	-

26. Результаты расчета П_У, руб

Показатели	Опытная группа (I и III)	Контрольная группа (II и IV)
У1	560	2380
У3	-	10075
У0	560	12455
ПУ	11895	-

27. Результаты расчета экономической эффективности, руб

Показатели	Опытная группа (I и III)	Контрольная группа (II и IV)
ЗВ	1080	-
ЭВ	10815	-
ЭР	10,0	-

Проводя расчет экономической эффективности и анализируя полученные нами данные можно сделать выводы о том, что при применении споробактерина для коррекции половой функции коров экономический эффект составил 9597,6 руб. или на 1 рубль затрат 2,3 руб. прибыли.

Проведенные аналогичные расчеты по применению споробактерина при массовых желудочно-кишечных и респираторных болезнях у телят, показали, что экономический эффект составил 10815 руб. или на 1 рубль затрат 10 руб.

V. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Подводя итог по представленных в нашей работе материалам, полученным по результатам многосторонних экспериментальных исследований и научно-производственных опытов, можно сделать вывод о целесообразности применения биологического препарата-пробиотика “Споробактерин” с профилактической целью при послеродовых осложнениях у коров и массовых заболеваниях новорожденных телят. Согласно литературным данным список работ, опубликованных по рассматриваемой нами тематике не достаточно широк, что побудило нас для проведения данных исследований.

На основании стремительно возрастающего в последние годы интереса к бактериям рода Bacillus и препаратам на их основе нами показано действие споробактерина на организм глубокостельных коров, характер и течение их послеродового периода и телят, полученных от исследуемых коров.

Характеризуя общий механизм лечебно-профилактического действия перорального применения споробактерина и других биологических препаратов-пробиотиков из живых бактерий рода Bacillus, включая Bac. subtilis 534, можно сделать вывод о положительном, безвредном, улучшающем здоровье и продуктивность животных действии споробактерина, на основании наших исследований и представленных данных литературы (Никитенко с соавт., 1990, 1994; Жданов П.И., 1996; Смирнов В.В. и соавт., 1982, 1992, 1993).

Одним из основных моментов в механизме действия споробактерина, по данным О.О. Федоровой (1990), Н.М. Грачева и соавт. (1996), является их способность:

• локального антагонистического ингибирования бациллами в желудочно- кишечном тракте патогенной и условно-патогенной микрофлоры, обеспечивающей развитие дисбактериоза, а это в свою очередь ведет к нормализации микрофлоры кишечника с одновременной элиминациейсальмонелл, шигелл, протеев, стафилакокков, грибов рода Candida;

• активации ферментов протеаз, амилаз, липаз, целлюлаз, пектиназ и др., которые повышают эффективность использования корма за счет его лучшей перевариваемости и усвояемости и далее положительном влиянии на белковосинтезирующую функцию печени и состояние иммунной системы и как следствие - повышение сохранности и продуктивности животных.

Таким образом, длительное потребление споробактерина приводит к эндоэкологизации организма, что дает возможность максимального проявления генетического потенциала животного.

Первый этап наших исследований включал изучение влияния споробактерина на организм коров.

При оценке морфологического и биохимического статуса крови следует учитывать, что картина красной крови является одним из важнейших показателей, по которому в известной мере можно судить об интенсивности процессов роста и продуктивности сельскохозяйственных животных (Акопян К.А., 1937).

В.Н. Байматов (1996) отмечал что высокое содержание лейкоцитов в крови служит косвенным показателем высокой реактивности организма.

В ответе на вопрос о причинах повышений уровня белка в сыворотке крови при назначении споробактерина мы склонны разделить общепринятую точку зрения, согласно которой такое повышение свидетельствует об активации азотистого обмена (Ракова Т.Н.,1985).

В проведенных нами исследованиях установлено, что длительное (1-1,5 месяца) применение споробактерина стельным коровам способствовали повышению содержания этих показателей. Полученные нами в процессе опыта результаты совпадают с данными исследований П.И. Жданова (1996), проводившего аналогичные исследования на супоросных свиноматках.

Изучение защитных свойств животного организма определяли по бактерицидной, бета – литической, лизоцимной активностям сыворотки крови и фагоцитарной активности нейтрофилов крови.

А.А. Барышев (1992) отмечал, что БАС крови отражает в общем гуморальные механизмы механизмы неспецифической защиты и обусловлена сложной системой комплемента, антителами, действием бета – лизина, лизоцима, лейкинов и пропердина.

К числу важных гуморальных факторов неспецифической защиты организма относят лизоцим (мурамидаза). Лизоцим представляет собой низкомолекулярные белки, обладающие высокими антимикробными свойствами. Этот фермент имеет широкое распространение в животном и растительном мире. Особенно высокая его концентрация выявлена в гранулоцитах, макрофагах и клетках зон активной пролиферации. Доказано наличие постоянного обмена молекулами лизоцима между макрофагами, сывороткой крови и гранулоцитами, предполагается его участие в морфогенетических процессах ( Бухарин О.В., Васильев Н.В., 1974).

Как указывает У. Бойда (1969) и Н.В.Васильев (1979) фагоцитарная активность нейтрофилов является центральным звеном неспецифической защиты организма животного.

В фагоцитарной реакции нейтрофилов и макрофагов, как указывает Р.В. Петров (1987), существенную роль играют лизосомальные, внутриклеточные и митохондриальные гидролитические ферменты в отношении белков, углеводов, липидов и нуклеиновых кислот. Она зависит от активности гуморальных факторов, в частности, наличия специфических антител и комплемента. Чужеродные антигенные агенты, покрытые антителами и комплементом, более активно присоединяются к рецепторам макрофагов и фагоцитируются.

В результате изучения влияния споробактерина на гуморальные факторы естественной резистентности организма коров, было установлено, что препаратулучшает показатели естественной резистентности: бактерицидной, бета -литической и лизоцимной активностей сыворотки крови, а также рост активности нейтрофилов. Всё вышесказанное указывает на иммуномодулирующуюроль споробактерина.

Полученные данные совпадают с результатами исследований П.И. Жданова (1995), полученных в опытах на свиньях двух- и восьмимесячного возраста, что подтверждает ранее высказанное предположение о благотворном влиянии споробактерина на клеточные факторы неспецифической защиты организма животных.

Также наши данные согласуются с исследованиями В.В. Подберезного, Н.И. Полянцева (1996), применявших споробактерин при маститах у коров. Они отмечали в своих исследованиях, что споробактерин вызывает гиперплазию лимфоидной ткани с увеличением числа плазматических, гигантских клеток и макрофагов (явление бластной трансформации лимфоцитов) сначала локальной системы защиты в тонком кишечнике, а затем во всех лимфоидных органах.

Кроме того, наши исследования согласуются с данными О.В. Бухарина, Н.В. Васильева (1974), Н.В.Курцева (1975) в том, что между титром лизоцима и числом лейкоцитов в крови существует прямая зависимость, а активностью бета – лизина обратная.

Изучая профилактическое влияние споробактерина на послеродовый период нами было установлено, что споробактерин обладал не только наилучшим профилактическим действием в отношении послеродовых патологий, но и положительным влиянием на показатели воспроизводительной функции, оказывая стимулирующий эффект на яичники коров. Так, при применении споробактерина у коров опытной группы период от отела до плодотворного осеменения составил в среднем 94,7±2,81 дня при 100%-ной оплодотворяемости, а у коров контрольной группы этот период составил 124,6±9,5 дня при 75%-ной оплодотворяемости, оказавшись таким образом в 1,3 раза больше.

Наши данные согласуются с исследованиями Л.Г. Войтенко (2000) применявшей споробактерин при послеродовом эндометрите. По данным автораприменение споробактерина обеспечило 100%-ную оплодотворяемость при в 2,1 раза более коротком сроке от отела до плодотворного осеменения по сравнению с контролем.

На втором этапе наших исследований перед нами стояла задача охарактеризовать действие споробактерина на организм телят с рождения до трех месяцев жизни. В процессе проделанной нами работы было установлено, что длительное, ежедневное скармливание споробактерина в дозе 2 мл на голову в сутки телятам, оказывает иммуномодулирующее действие на организм животных.

Иммуномодулирующие свойства споробактерина, как указывает П.И. Жданов (1996), проявляются увеличением в крови числа эритроцитов, содержания гемоглобина, общего белка, альбуминов, бета-, гамма-глобулинов, фагоцитарной активности нейтрофилов, бактерицидной активности сыворотки крови, комплементарной и бета-литической активности, количества лимфоцитов при одновременном снижении количества лейкоцитов и лизоцимной активности.

Обобщая полученные результаты по изучению влияния споробактерина на сохранность и прирост живой массы исследуемых телят нами отмечено, что применение споробактерина способствовало достоверному увеличению прироста массы тела. Так, среднесуточный прирост живой массы к 90-му дню жизни телят, по сравнению с контролем, был выше в 2,8 раза в I группе; 1,4 раза во II группе; 2,4 раза в III группе.

Заболеваемость телят желудочно-кишечными болезнями чаще отмечалась в первый месяц жизни и была в 3,3 раза меньше в группах получавших споробактерин (I и III). Легочные болезни отмечались чаще в период с 60 по 90 днижизни в группах не получавших споробактерин (II и IV). Процент сохранности телят по группам составил в I группе – 100%; II – 90%; III – 100%; IV – 60%.

Проведенные исследования свидетельствуют о положительном влиянии споробактерина жидкого на интенсивность роста и сохранность молодняка телят.

Данные наших исследований согласуются с работами других ученых. Так, В.И. Мозжерин и соавт. (2000) для повышения роста и развития молодняка применяли пробиотик – бактиспорин. Бактиспорин представляет собой живые бактерии Вас. subtilis 3Н, которые выделяют антибактериальное вещество, подавляющее развитие патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.

В.П. Иноземцев и соавт. (1998) для профилактики и лечения желудочно-кишечных болезней телят успешно применяли препарат ветом-1.1, являющийся продуктом генной инженерии и содержащий микробную массу живых антагонистически активных клеток споровой формы бактерий Вас. subtilis.

Для коррекции дисбактериозов и повышения прироста массы тела И.Н. Жирков, И.И. Братухин (1999) применяли пробиотик РАС, созданный на основе Вас. subtilis 534.

Также для сохранности молодняка и повышения прироста живой массы применяются пробиотики бифилакт и бифимол, содержащие в своем составе бифидобактерии (Шубин А.А. и соавт., 1994).

Б.В. Тараканов и соавт. (1999) отмечали в своих исследованиях эффективность применения нового пробиотика лактоамиловорина, разработанного на основе лактобактерий. Он обеспечивает поддержание оптимального микробного баланса в пищеварительном тракте, повышение неспецифической резистентности молодняка животных, их сохранности и прироста массы тела.

Заканчивая обсуждение полученных данных, необходимо отметить разнообразное применение споробактерина. В производственных условиях его можно применять как эффективное средство для профилактики послеродовых осложнений и коррекции воспроизводительной функции у коров; назначение глубостельным животным обеспечивает получение стабильных и более высоких привесов, а также высокий процент сохранности молодняка при массовых желудочно-кишечных и респираторных болезнях. Также следует отметить, чтоспоробактерин является экологически чистым препаратом, физиологичным по своему действию, безвредным для животных, простым в применении, дешевым, технологичным и экономически выгодным при групповом применении.

VI. ВЫВОДЫ

1. Назначение споробактерина глубокостельным коровам в дозе 20 мл на голову в сутки за 30-40 дней до отела способствует усилению функционирования клеточных и гуморальных факторов защиты организма животных и благоприятно влияет на течение послеродового периода.

2. Длительное применение споробактерина коровам в указанной выше дозе улучшает воспроизводительную функцию животных, обеспечивая 100%-ную оплодотворяемость и получение более крупноплодного потомства.

3. Ежедневное скармливание споробактерина телятам в дозе 500 млн. микробных тел на килограмм живой массы оказывает выраженное иммуномодулирующее действие на организм животных.

4. Применение споробактерина по указанной выше схеме уменьшает отход молодняка от желудочно-кишечных и легочных болезней различной этиологии в 3,3 раза.

5. Пероральное применение споробактерина телятам с рождения до 90 дня жизни в дозе 500 млн. микробных тел на килограмм живой массы способствовало достоверному увеличению прироста массы тела, по сравнению с контролем в 2,8 раза в I группе; 1,4 раза во II группе; 2,4 раза в III группе.

6. Экономический эффект от применения споробактерина на голову составил: коровам - на 1 рубль затрат 2,3 руб. прибыли; телятам – на 1 рубль затрат 10 руб. прибыли.

VII. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для повышения резистентности глубокостельных коров и телят полученных от них, рекомендуем скармливать споробактерин в последние месяцы стельности.

2. Для профилактики послеродовых осложнений и более быстрому восстановлению половой функции коров рекомендуем назначать споробактерин глубокостельным коровам в дозе 20 – 25 мл на голову в сутки.

3. С целью повышения прироста массы тела и уменьшения отхода молодняка от желудочно-кишечных и легочных болезней рекомендуем применение споробактерина телятам с рождения до 90 дня жизни в дозах от 2 до 5 мл на голову в сутки.